材料与方法
1.主要试剂:限制性内切酶、T4 DNA连接酶购自华美生物工程公司,Lipofectin reagent、G418购自Gibco公司,pLXSN为逆转录病毒载体,pBS.CD为携带CD基因的质粒。E.coli DH5α、PA317及NIH3T3细胞株均为本室保存。
2.重组逆转录病毒载体pLCDSN的构建:用EcoR Ⅰ及BamH Ⅰ双酶切质粒pBS.CD及逆转录病毒载体pLXSN,获得1.5 kb左右的CD基因和5.8 kb左右的线性载体DNA,经回收、纯化、连接,转化至E.coli DH5α中,筛选出阳性转化子,碱裂法抽提质粒。
3.基因转染及病毒滴度测定:pLCDSN经脂质体法转染PA317细胞,经G418 1 mg/ml筛选获得阳性细胞克隆,并扩大培养。收集重组病毒上清液,以NIH3T3细胞为靶细胞测定重组逆转录病毒滴度。
4.neor基因检测:上游引物:5′-ACA ATC GGC TGC TCT GAT-3′,下游引物:5′-CTC GCT CGA TGC GAT GTT-3′;以细胞基因组DNA为模板,进行PCR扩增,PCR产物进行琼脂糖凝胶电泳分析。
5.辅助病毒的检查:应用重组逆转录病毒转导NIH3T3细胞和肝癌SMMC7721细胞,经G418 1 mg/ml筛选后收集培养液。应用此培养液,加入polybrene 8 μg/ml,分别感染5×105 NIH3T3细胞和SMMC 7721细胞3小时,置换新鲜培养基,培养24小时后,消化传代,加入G418 1 mg/ml,筛选7天,观察有无抗性克隆产生。
结果
1.逆转录病毒载体的构建:重组质粒pLCDSN经Hind Ⅲ单酶切,切出了7.34 kb的线性DNA片段;用Kpn Ⅰ单酶切,切出了3.1 kb和4.24 kb两个DNA片段;用EcoR Ⅰ和BamH Ⅰ双酶切,切出了1.52 kb的目的基因片段和5.82 kb的DNA片段。上述结果证明,CD基因已克隆至载体pLXSN中,将重组载体命名为pLCDSN。
2.基因转染PA317细胞:细胞经基因转染后,经G418 1 mg/ml筛选培养,2~3天细胞开始死亡;7~8天大部分细胞死亡,并开始有新的细胞克隆出现;继续用G418筛选2周后,挑选抗性克隆进行扩大培养。将pLXSN空载体转染的抗性细胞克隆命名为PA/LX,pLCDSN转染的抗性细胞克隆命名为PA/CD。
3.neor基因扩增:经neor基因的PCR分析,在pLCDSN转染的PA/CD细胞中扩增出了预期的430 bp大小的DNA片段,而在未转染的PA317细胞中则不能扩增出相应大小的DNA片段。表明重组逆转录病毒载体pLCDSN对PA317细胞的基因转移是成功的。
4.重组逆转录病毒滴度的测定:所制备的重组逆转录病毒的滴度约(4.6×105~3.4×106) CFU/ml,表明pLCDSN在转染PA317细胞以后产生了较高滴度的重组病毒。
5.辅助病毒的检测:重组逆转录病毒感染NIH3T3和SMMC7721细胞后,应用NIH3T3细胞和SMMC7721细胞的培养液再次感染NIH3T3细胞,不再出现抗性细胞克隆。表明重组逆转录病毒只有一次性的感染能力,没有辅助病毒的产生。
讨论
CD基因作为一种自杀性基因,将其导入肿瘤细胞后,可使无毒的前体药物5-Fc转化为抗癌药物5-Fu,达到杀伤肿瘤细胞的作用。我们将CD基因组入逆转录病毒载体pLXSN,构建成重组逆转录病毒载体pLCDSN,经脂质体法导入PA317包装细胞,neor基因的PCR分析表明,外源基因已整合入包装细胞的基因组中。本实验构建的重组逆转录病毒载体pLCDSN,可使CD基因受控于具有很强启动作用的病毒LTR启动子,经PA317细胞包装后,得到了较高的重组病毒滴度。在逆转录病毒表达载体用于基因治疗的过程中,安全性是受到关注的重要问题之一。载体pLXSN及包装细胞PA317具有较好的安全性。1989年开展的TIL/N2基因转移及1990年首例ADA基因治疗的临床试验均使用PA317包装细胞。Anderson报道,从灵长类动物的实验表明,辅助病毒导致肿瘤需要两个条件:高剂量的辅助病毒和动物严重的免疫抑制,少量的辅助病毒导致肿瘤的可能性非常低。实验表明,重组逆转录病毒pLCDSN是安全可靠的。pLCDSN可望作为一种安全高效的CD基因转移和表达载体用于肿瘤基因治疗的实验研究和临床实践中。
(收稿:1998-04-03修回:1999-03-15)
