1涎腺的组成
人类有3对大唾液腺:腮腺、颌下腺和舌下腺。腮腺为纯浆液性腺,分泌物含淀粉酶多,粘液少;颌下腺为混合腺,浆液腺细胞占80%,粘液腺细胞占5%;舌下腺也为混合腺,粘液腺细胞占60%,浆液腺细胞占30%,其余为导管、血管等间质成分[1]。恒河猴和鼠是研究涎腺照射后形态学和功能变化最常用的实验动物[2]。
2涎腺细胞照射后形态学改变
2.1早期变化
人类涎腺组织照射后早期形态学变化的资料较少,文献报道的主要是鼠或恒河猴涎腺照射后早期形态学改变。形态学变化包括实质细胞质空泡形成、分泌细胞脱颗粒和细胞进行性退化。涎腺细胞是由高分化细胞组成,在一般情况下不合成DNA或不分裂。大多数细胞位于使细胞周期延长的G1期或间期,是非周期、功能上成熟的细胞。从放射生物学观点看,涎腺细胞应该是相当放射抗拒的,应在照射后数周或数月才显示照射损伤。值得注意的是单次低剂量2.5Gy照射后24小时内就可以观察到实质细胞的死亡[3-5]。Stephens等[4,5]以60Co单次剂量2.5~15Gy照射恒河猴涎腺,连续1~72小时取腮腺、颌下腺组织标本进行形态学研究,发现2.5~5Gy剂量照射时,仅有浆液腺细胞的随机性坏死;而7.5~15Gy剂量照射时,整个腺泡结构发生坏死和退化。腺泡细胞的形态变化呈凋亡特征:在6小时的活检标本中,细胞核轮廓变得不规则和成角,染色质形成团块、边聚,浆液腺细胞分离,失去和邻近细胞的接触。随后的标本中细胞核浓染、呈新月形或表现为核固缩、核碎裂及核溶解,数目明显增多。组织切片上可以观察到退化细胞比例和凋亡细胞数随着时间和剂量增加而增多,且浆液腺细胞的损伤比例较粘液腺细胞更为明显。浆液腺细胞坏死的同时伴有中性粒细胞的浸润,但在照射后24小时消退,被浆细胞和淋巴细胞代替。血管和导管的变化和腺泡细胞损伤相比不明显。
2.2晚期变化
在灵长类,腮腺和颌下腺用7.5Gy或更高的剂量照射后16~20周,可以显示出腺泡的退化和纤维化形成。照射后40周,萎缩的程度和16~22周后所观察到的相似[3,4]。恒河猴腮腺接受7.5~15Gy的剂量16~22周后萎缩,仅有少量的腺泡保存,常见单个或三二成群的浆液腺细胞,普遍伴有腺叶之间的纤维化和浆细胞浸润,并且40周后未显示有恢复。腺叶之间有致密的胶原间质,一些腺叶仅由导管组成。闰管上皮细胞排列的形状、大小和极性变化非常大,伴闰管扩大[4,5]。最后涎腺组织纤维化、变硬、体积缩小,与周围组织紧密粘连。
3涎腺细胞死亡机制
涎腺细胞照射后死亡的具体机制,一直是研究的热点。涎腺细胞被认为是照射晚反应效应器,但涎腺组织照射后不久涎液量及其成分的早期变化表明涎腺组织是放射早反应组织[6],且实质细胞的死亡在单次剂量如2Gy低的电离照射后24小时就可以观察到[3,5]。这些细胞照射后快速死亡的模式定义为间期细胞死亡。恒河猴腮腺照射后离体培养器官显微镜观察显示浆液腺细胞核染色深、核呈多种畸形,包括核固缩、核碎裂和边缘化等凋亡细胞形态改变[7]。核变形数目、剂量效应与腮腺体内照射后24小时所观察到的结果相似,提示受照腮腺浆液腺细胞的凋亡是间期细胞死亡的直接表达[3,7]。Stephens等[5]分析恒河猴腮腺单次剂量2.5~15Gy照射后1~72小时活检标本,发现在低剂量2.5Gy照射后1小时就有浆液腺细胞致死性放射损伤的表达。另一组资料也显示照射腮腺及颌下腺,浆液腺细胞在24小时之内明确表达损伤,细胞损伤数目随照射剂量和时间的延长而增加,但单个浆液腺细胞损伤特征在所有的单次剂量时是一样的[3]。根据这些细胞形态特征,提示涎腺组织浆液腺细胞是由于凋亡而死亡。和腺泡细胞损伤相比,血管和导管的变化较少或不存在,且腺泡细胞的死亡程度和炎症细胞的浸润程度不相关,从而提示浆液腺细胞的死亡是由照射直接引起。所以Stephens及其同事认为和凋亡一样的细胞损伤是照射所致涎腺细胞损伤的主要机制[3]。
放射能够导致分泌颗粒包膜的过氧化损伤,从而使涎液组分如消化酶和金属离子泄入细胞,导致细胞死亡。有结果表明具氧化还原活性的铁离子和铜离子在放射所致涎腺细胞死亡中起重要的催化作用[8]。因此,若放射治疗之前用药物如异丙肾上腺素将分泌颗粒预先排出细胞外(脱粒作用),这样照射时细胞的损伤就可以减轻。但Peter等[9]报道的一组动物涎腺形态学研究结果显示,照射前用异丙肾上腺素诱导脱粒作用,不能减少照射所致早期腺泡细胞死亡。这就提示腺泡细胞的放射敏感性和分泌颗粒的存在不直接相关[10]。而另一组动物实验显示异丙肾上腺素使用后,对腮腺放射所致功能紊乱具减免作用[11]。一些作者认为异丙肾上腺素对腮腺功能的保护作用可能不是由于药物对腺泡的脱颗粒作用,而可能是药物刺激了腺泡细胞的增殖[9-11]。
腺泡细胞的凋亡是否是由其他机制引起,它的细胞靶或亚细胞机制如何,如DNA的损伤、细胞膜的改变或溶酶体的释放,尚未弄清[4,7]。相对低的剂量照射不分裂浆液腺细胞后凋亡的快速表达提示导致细胞死亡的关键不太可能是DNA损伤[7]。而Radford等[12]认为DNA双链断裂是快速间期死亡(凋亡)的合适刺激。动物实验研究结果揭示涎腺功能照射后的早期变化可能主要是由于膜结构的照射损伤所引起[13,14]。因此涎腺腺泡细胞的致死性损伤主要是由于细胞膜的失调紊乱而不是DNA的直接损伤所致,提示细胞膜为间期死亡的主要靶。而Henriksson等[15]认为调节涎腺组织损害表达的机制至少部分地受肥大细胞及其产物的影响。
4涎腺细胞照射后增殖
涎腺细胞有丝分裂活动较少,但能受适当刺激激发而产生分裂,闰管细胞分化成腺泡细胞[4]。临床高剂量照射腮腺组织(40~60Gy,20~30次),仍可观察到腮腺功能的部分恢复,提示放射后存在着细胞增殖现象。Gustafsson等[16]用光镜和电子显微镜观察鼠腮腺分割照射(6Gy/次或9Gy/次,5次/周)后180天组织结构变化,发现残留的腺泡细胞是正常的形状,包含有分泌颗粒。但腺泡排列不整齐、较正常腺泡大,闰管比正常的大,并有大管腔,提示有细胞再生[13,16]。引起腺泡细胞再生的祖先细胞一定存在于某些导管-腺泡细胞单位,至于这种能力是存在腺泡细胞本身还是闰管储备细胞尚有争议[16]。Peter等[2]利用溴脱氧尿核苷(BrdU)了解X线单次15Gy照射鼠腮腺及颌下腺后不同时间各上皮细胞类型增殖活动,标记指数(label index,LI)首先在闰管中检测到,提示闰管中的祖先细胞可能提供新的细胞给其它结构单位;还发现腮腺中闰管细胞增殖活动较颌下腺中的强,提示腮腺具更高的放射敏感性。
5涎腺功能照射后改变
照射后涎液分泌减少导致口腔干燥。人类涎腺放射后涎液电解质浓度的研究提示涎腺的主要损伤发生在腺泡和导管系统。涎腺功能常用的数量化检测方法包括测定涎液流量率、pH值、涎液成分如钾、钠、蛋白质及淀粉酶变化等。近来有一种简便无害的评价涎腺功能方法,即涎腺99mTc清除率测定法。用定量的99mTc闪烁测定法评价涎腺的俘获、分泌、排泄,用以分析照射剂量与涎腺功能变化之间的关系和评价随访中涎腺功能恢复程度[17,18]。
5.1涎液量的变化
涎腺组织照射后涎液量迅速减少,腮腺与下颌腺涎液流量率都有明显的量效关系,但发生的时间有差别。Nagler等[6]分析单次X线2.5~15Gy照射鼠涎腺涎液变化,发现照射后3天时腮腺流量率明显下降,而此时颌下腺涎液流量率变化不明显,但40天时腮腺和颌下腺的涎液流量率均显著下降。另一组资料大鼠单次剂量15Gy照射后24小时的腮腺刺激涎液流量率较对照组明显下降,而颌下腺的涎液流量率与对照组相仿[19]。这间接地说明腮腺组织较颌下腺组织对放射更为敏感。
涎液流量率的减少和照射剂量的大小密切相关。临床资料显示腮腺和颌下腺或舌下腺刺激涎液流量率在常规分割总剂量≤50Gy时较剂量≥68Gy明显增加[20]。而Olmos等[18]报道的资料表明对于单个腺体(腮腺或颌下腺),常规分割总剂量25Gy或更少的剂量,所有腺体都保持有分泌功能;25~45Gy有一半保留有分泌功能;而剂量超过45Gy时,几乎是不可逆损害。但另一组资料提示就早期涎液流量率减少来说,连续加速超分割(CHART)产生最大效应的剂量应在15~40Gy之间[21]。Franzen等[22]报道的临床试验资料示腮腺常规分割剂量低于52Gy时,在放射治疗后18个月都保留一些功能,但强调
