《中国图书资料分类法》分类号R732.54
Anti-Tumor Effect of GM-CSF Gene or B7-1 Gene Modified Murine EL-4 Cell Vaccine
Zhang Qingyuan, Li Dianjun, Wang Zhihua, Zhang Cunyan
(Cancer Research Institute of Harbin Medical University, Harbin 150040)
AbstractObjective: To investigate the vaccine potency of GM-CSF or B7-1 gene-modified tumor cells. Methods: The EL-4 lymphoma cells were transduced with recombinant retrovirus containing the murine GM-CSF gene or B7-1 gene, respectively. Results: Flow cytometry analysis showed that expression of their surface marker between wild-type EL-4 cells and gene transduced tumor cells was the same except for CD80 positive in B7-1 gene transduced cells. GM-CSF gene or B7-1 gene transduced EL-4 cells resulted in remarkable loss of tumorigenicity in syngenetic mice. The systemic protective immunity was induced against the challenge with EL-4/wt cells. Therapeutic vaccine with EL-4/GM-CSF or EL-4/B7-1 cells could retard the growth of established early-stage EL-4/wt tumor significantly, but not retard the growth of late-stage EL-4/wt tumor. Irradiated GM-CSF gene transduced EL-4 cells showed strong vaccine effect against challenged EL-4 cells, but irradiated B7-1 gene transduced EL-4 cells showed weak vaccine effect. Remarkable cooperative anti-tumor effect against challenged EL-4 cells was observed when both irradiated EL-4/GM-CSF and EL-4/B7-1 were inoculated together. Conclusion: GM-CSF gene or B7-1 gene transduced EL-4 cells can be used as a good tumor vaccine. It suggested that the combination of the two kinds of vaccine has potential application value in human cancer treatment.
Key wordsGM-CSF; B7-1(CD80); tumor vaccine; gene therapy
自90年代起开展了基因修饰的肿瘤疫苗的研究,许多文献报道,通过将一些对免疫功能具有调节作用的细胞因子及共刺激因子转入肿瘤细胞后制成肿瘤疫苗,可以有效地激活机体的抗肿瘤免疫反应[1,2]。本文分别将GM-CSF及B7-1基因转入鼠胸腺淋巴瘤细胞内以观察转基因的肿瘤细胞作为瘤苗激发宿主抗癌免疫的功能。
1材料与方法
1.1实验材料
雌性C57BL/6小鼠,购于中国医学科学院实验动物中心,所有实验均用8~12周龄的小鼠。EL-4胸腺淋巴瘤细胞从美国ATCC(Rochville,MD)获得,常规培养于含10%胎牛血清的DMEM培养液中。ΨCRIP-MFG鼠GM-CSF和CD80细胞系由日本东京大学医科院研究所提供,此重组逆转录病毒产生细胞在含有10%胎牛血清的DMEM培养液中常规培养。
1.2基因转导
对数生长的EL-4细胞,分别加入转染了MFG-GM-CSF-Neu及MFG-CD80-Neu的包装细胞培养液上清,培养24~48 h,加入G418(800 μg/ml)继续培养12 d,得到转GM-CSF和B7-1基因的EL-4细胞株,应用有限稀释法和G418(800 μg/ml)筛选法进一步克隆高表达的EL-4/GM-CSF细胞和EL-4/B7-1细胞。
1.3GM-CSF分泌水平测定与细胞表面标志分析
通过酶联免疫吸附实验(ELISA)方法测EL-4/GM-CSF细胞的GM-CSF表达量。EL-4/Wt及转基因肿瘤细胞经FITC联接的抗CD80,抗H-2Kb,抗H-2Db,抗IAb单克隆抗体作用后,用流式细胞仪检测细胞的CD80,MHCⅠ类和MHCⅡ类抗原的表达。
1.4病毒转化细胞的体外增殖
分别取EL-4/Wt,EL-4/Neu, EL-4/B7-1和EL-4/GM-CSF细胞各1×104,微孔板培养6 d,MTT法测定每天细胞的增殖情况。
1.5肿瘤原性测定
分别将1×105 EL-4/Wt,EL-4/Neu,EL-4/B7-1, EL-4/GM-CSF细胞注射于4组同系C57BL/6小鼠右侧背部皮下(每组10只),观察肿瘤出现(直径约大于2 mm)的时间,每2 d用游标卡尺进行测量,肿瘤结节大小以肿瘤最大径×最小径的平方除以2计算。 28 d后,将1×105 EL-4/Wt细胞经皮下注射入接种了EL-4/GM-CSF或EL-4/B7-1细胞而未长出肿瘤的实验小鼠的左侧背部,观察是否有肿瘤出现。
1.6转基因肿瘤细胞的实验性治疗
将1×105 EL-4/Wt肿瘤细胞皮下接种于6组(每组10只)小鼠的右侧背部(第0天),经亚致死量(5 000 rad)γ-射线照射的1×105 EL-4/Wt,EL-4/B7-1, EL-4/GM-CSF瘤苗在肿瘤生长的早期(第3, 6, 9天)及晚期(第14, 17, 20天)分3次分别注射于上述荷瘤小鼠的腹部皮下,观察肿瘤的生长情况及小鼠的生存时间。
1.7转基因肿瘤细胞的免疫保护实验
将5×105 EL-4/Wt,EL-4/B7-1, EL-4/GM-CSF活细胞及射线灭活的EL-4/Wt, EL-4/B7-1, EL-4/GM-CSF瘤苗分别注射于6组(每组10只)小鼠的左侧背部皮下,14 d后再将3×105 EL-4/Wt细胞接种于小鼠的右侧背部皮下,再次攻击之日定为第0天,观察肿瘤的生长情况及小鼠的生存时间。
1.8L-4/GM-CSF和EL-4/B7-1联合抗肿瘤免疫效应
两种经射线灭活的EL-4/Wt,EL-4/GM-CSF,EL-4/B7-1瘤苗按1∶1混合(每种2.5×105),接种小鼠的左侧胁部皮下,14 d后,用3×105非照射的EL-4/Wt细胞再次接种于鼠的右侧胁部皮下,测量肿瘤的大小并观察小鼠的生存情况,将照射灭活的EL-4/Wt,EL-4/GM-CSF,EL-4/B7-1每种肿瘤疫苗的量提高到5×106按1∶1混合进行免疫,14 d后用1×106 EL-4/Wt细胞再次接种,再次接种之日定为第0天,观察肿瘤的生长及消退情况,总计100 d。
以上实验均重复2次,所有用于再次攻击的细胞均经台盼蓝染色证实95%以上为活细胞。
2结果
2.1转基因EL-4细胞株的建立
转基因肿瘤细胞在体外培养中的形态、生长速度与其亲代细胞相同,流式细胞分析表明,转基因肿瘤细胞表面MHCⅠ类抗原H-2Kb,H-2Db表达为阳性,MHCⅡ类抗原Ⅰ-Ab表达为阴性,与亲代细胞相同,仅转B7-1基因的肿瘤细胞诱发了CD80的高表达,经ELISA方法检测EL-4/GM-CSF表达量每24 h为24 ng/106细胞。
2.2转基因肿瘤细胞的成瘤性
将EL-4/Wt,EL-4/Neu肿瘤细胞接种于小鼠皮下,100%成瘤。而接种同样量EL-4/B7-1, EL-4/GM-CSF细胞的鼠肿瘤检出时间延长,生长速度减慢,大约50%小鼠能无瘤生存, 3只接种EL-4/GM-CSF细胞的小鼠在最初10 d长出肿瘤,但在接种后20 d肿瘤开始消退, 说明机体产生了抗肿瘤的免疫反应,(图1)。28 d后,再将1×105 EL-4/Wt细胞分别经皮下注射于接种EL-4/GM-CSF细胞而未长出肿瘤的9只小鼠左侧背部,未见肿瘤生长, 注射于接种EL-4/B7-1细胞而未长出肿瘤的10只小鼠左侧背部,有5只小鼠未见肿瘤生长。
图1转GM-CSF基因及转CD80基因的EL-4
肿瘤细胞成瘤性下降
Fig. 1GM-CSF gene or CD80 gene transduced EL-4 cell
resultedin remarkable loss of tumorigenesis
2.3转基因肿瘤细胞的实验性治疗作用
在肿瘤生长早期进行治疗,能有效地延长荷瘤宿主的存活时间,用EL-4/B7-1, EL-4/GM-CSF瘤苗进行治疗的中位生存期分别是(30.4±1.8)d和(33.1±1.8)d明显优于用野生型瘤苗进行治疗[中位生存期(23.2±1.5)d],有显著统计学差异(P<0.01);在肿瘤生长的晚期进行治疗,荷瘤小鼠中位生存期EL-4/Wt 组(19.4±1.7)d, EL-4/B7-1组(20.8±1.5)d, EL-4/GM-CSF组(20.1±2.1)d, 未能显示出明显治疗作用。
