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耐利福平结核分枝杆菌rpoB基因突变

2022-07-29
来源:求医网
利福平(RFP)耐药性的产生系由于结核分枝杆菌(结核菌)编码RNA聚合酶β亚基(rpoB)的基因突变所致[1]。目前检测rpoB基因突变的聚合酶链反应(PCR)方法,所用引物大多对结核菌特异性较差,其他分枝杆菌也能获得扩增。我们结合国外研究资料,采用3条针对结核菌的特异性引物,进行单管半套式PCR扩增,并应用单链构象多态性(SSCP)法检测rpoB基因突变,从分子水平探讨结核菌RFP耐药和rpoB基因突变的关系。

一、材料与方法

1.菌种、菌株来源:结核菌H37RV标准株、15株分枝杆菌和8株富含GC细菌来源于中国药品生物制品鉴定所。55株结核菌临床分离株由河北省胸科医院及本院细菌室提供,按常规进行药敏试验,其中RFP敏感株15株,RFP耐药株40株。

2.DNA提取:采用经典酶解法。

3.单管半套式PCR:(1)引物:根据结核菌rpoB基因序列[2]设计3条引物,R15′-CGTGGAGGCGATCACACCGCAGAC-GT-3′,R25′-AGTGCGACGGGTGCACGTC-GCGGACCT-3′,R35′-GACCTCCAGCCCGGCACGCTCACGT-3′,最终扩增产物为一193 bp片段,该片段包括了易发生RFP耐药突变的69 bp范围,并具有唯一针对结核菌的特异性[3]。(2)单管半套式PCR[4]:采用一个Eppendorf管、两步法PCR。

4.SSCP分析:取10 μl第2轮PCR扩增产物加入等体积甲酰胺变性液(98%甲酰胺,10 mmol/L EDTA,0.025%溴酚蓝,0.025% 二甲苯腈)混匀,95℃变性10分钟,冰浴骤冷,立即上样于预电泳30分钟的6%非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳,6℃,200V电泳3~4小时,EB或银染色后观察结果并照相。

二、结果

1.结核菌rpoB耐药基因引物PCR扩增的特异性:应用R1、R2引物进行第一轮PCR后均未扩增出DNA条带,而用R1、R3引物进行第二轮PCR后,H37RV和55株结核菌均扩增出一条193 bp DNA条带,而15株其他分枝杆菌和8株富含GC细菌均未扩增出193 bp DNA条带,其特异性为100%。

2.结核菌rpoB耐药基因PCR扩增的敏感性:纯化的H37RV染色体DNA经751分光光度计定量后,用双蒸水按10倍系列稀释至0.1 fg/μl,取1 μl进行单管半套式PCR扩增后,取5 μl扩增产物行2%琼脂糖凝胶电泳,EB染色后观察其敏感度约为10 pgDNA,即有10个左右细菌便可检出。

3.结核菌临床分离株SSCP检测结果:结核菌临床分离株SSCP分析以标准株H37RV为对照,15株RFP敏感株的SSCP迁移率与H37RV相同,而34株RFP耐药株与H37RV的SSCP迁移率不同,其阳性率为85%(34/40株)。

三、讨论

RpoB基因是一种高度保守序列,除结核菌外,它还广泛存在于其他分枝杆菌和富含GC碱基的各类细菌。Hunt等[3]通过对分枝杆菌和富含GC细菌基因扩增产物的DNA序列分析,发现在其共有的高度保守序列之外,由6个核苷酸组成的5种特异性序列,其结合产物仅出现于结核菌。根据上述研究结果,我们应用3条针对结核菌的特异性引物进行单管半套式PCR,避开了包括结核菌在内的各种分枝杆菌以及富含GC的各类细菌所共有的高度保守序列,获得了唯一针对结核菌的特异性,克服了大多PCR对检测结核菌特异性不高的缺点。本研究经两轮PCR扩增后,唯结核菌扩增出一条193bp的DNA片段,而其他15种分枝杆菌和8种富含GC细菌均未得到扩增,表明它是一种特异性较高的检测结核菌的PCR方法。此方法只需1个Ependorf管,减少了试验中的污染机会,其敏感性达10pg DNA,相当于10个左右结核菌。

现已明确RFP是通过与rpoB基因编码的RNA聚合酶β亚基结合,干扰转录启动和RNA延伸而发挥其抗结核作用的,若rpoB基因突变,其构象发生变化,阻止了RFP结合,即导致对RFP耐药。这使我们通过简便的PCR-SSCP即可检测结核菌有无rpoB基因突变。我们应用单管半套式PCR-SSCP分析了15株RFP敏感株和40株RFP耐药株结核菌,结果15株RFP敏感株SSCP图谱与参考株H37RV一致,即遗传标志rpoB基因未发生突变;而40株RFP耐药株中,34株SSCP图谱与H37RV有差异,即ropB基因发生了突变,其发生率为85%,与文献报道相仿[3,4]

总之,本研究证明了单管半套式PCR是一种检测结核菌的简便、敏感、特异的方法,同时结合SSCP技术测定结核菌rpoB基因突变,对判断RFP耐药、研究RFP耐药机理及指导临床合理用药具有一定实用价值。

参考文献

1Morris S, Bai GH, Suffys P, et al. Molecular mechanisms of multiple drug resistance in clinical isolates of Mycobacterium tuberculosis.J Infect Dis,1995, 171:954-960.

2Miller LP, Crawford JT, Shinnick TM. The rpoB gene of Mycobacterium tuberculosis. Antimicrob Agents Chemother, 1994,38:805-811.

3Hunt JM,Roberts GD,Stockman L,et al. Detection of a genetic locus encoding resistance to rifampin in mycobacterial cultures and in clinical specimens.Diagn Microbiol Infect Dis, 1994,18:219-277.

4Whelen AC, Felmlee TA, Hunt JM,et al. Direct genotypic detection of mycobacterium tuberculosis rifampin resistance in clinical specimens by using single-tube heminested PCR. J Clin Microbiol,1995,33:556.

(收稿:1998-10-09修回:1999-01-21)