Deferoxamine protects against gentamicin ototoxicity
CHEN Yang, WANG Jinling,HUANG Weiguo,et al. Department of Otorhinolaryngology, XiJing Hospital, Fourth Military Medical University, Xi’an 710032
【Abstract】ObjectiveTo study the prevention of gentamicin(GM) ototoxicity by deferoxamine(DFO) in the guinea pig.MethodsGuinea pigs were randomly assigned to three experimental groups (GM-treated alone, dFO-treated alone, GM and DFO in combination) and one control group. Acoustic brainstem response(ABR), the surface preparation and transmission electron microscopy were utilized to evaluate the hearing thresholds and the cochlear morphology. To explore the mechanism associated with deferoxamine protection, serum levels of GM, BUN and Cr, together with concentration of MDA, SOD and iron in cochlear and renal tissues were measured.ResultsThe GM group developed up to 40 ~60 dB of the threshold shifts at 8 kHz while the GM+DFO group developed only 15 ~25 dB of the threshold shifts (P<0.05). Morphological changes were consistent with functional changes. DFO did not alter serum levels of GM. Renal function of GM group was damaged obviously. However, changes of MDA, SOD and iron were not significant (P>0.05). MDA and iron concentrations in cochlear tissue of the GM+DFO group were significantly lower than those in the GM group (P<0.05) while SOD level was much higher than that in GM group.ConclusionThis study suggests that free radical and iron involve in GM ototoxicity and DFO may become a promising therapeutic agent that can be used to reduce gentamicin ototoxicity.
【Key words】Gentamicins Poisoning Hearing disorders Deferoxamine Drug interactions
Priuska等[1]提出庆大霉素(gentamicin,GM)耳毒性可能是由于GM在体内形成GM-铁复合物,催化产生自由基而损伤毛细胞。自由基清除剂和铁螯合剂可以减轻GM 引起的听力损害[2]。本实验通过ABR检测、耳蜗铺片及透射电镜技术,观察豚鼠用药前后听反应阈及耳蜗毛细胞、血管纹的改变,观察铁螯合剂甲磺酸去铁胺(deferoxamine mesylate,DFO)对抗GM耳毒性的作用;同时检测耳蜗和肾皮质组织丙二醛、超氧化物歧化酶和铁离子的含量,测定血清GM和尿素氮、肌苷水平,以探讨其可能的作用机理及其与肾毒性的关系。
材料及方法
1.实验动物:耳廓反射正常的健康雄性杂色豚鼠50只,体重250~350 g,随机分成4组。 GM组17只:硫酸庆大霉素(西北第二合成药厂生产,批号970818) 120 mg/kg皮下注射,每天1次,连续19 d;DFO组8只:DFO(Sigma公司,美国,密西根大学医学中心Kresge听力研究所提供) 每次100 mg/kg皮下注射,每天2次(间隔4 h),连续19 d;GM+DFO组17只:GM和DFO同时注射,4 h后注射DFO,剂量同上;对照组 8只:生理盐水等量皮下注射,每天1次,连续19 d。 动物实验期间每天秤体重以调整药量。
2.ABR检测听反应阈:用药前及用药后第9和19 d、第28和42 d周检测双耳ABR。动物在戊巴比妥钠 40 mg/kg 腹腔注射麻醉后,针型记录电极置前额正中皮下,参考电极置测试耳外耳道口后上皮下,鼻尖接地。用SS-1型声刺激器,286计算机自动采样,采用短声(click)1、2、4、8 kHz刺激,间隔75 ms,扫描时间20 ms,叠加256次,带通滤波80~1 500 Hz,在屏蔽隔声室内常规测试。
3.透射电镜标本制备:停药后第2 d检测ABR后各组随机取4 只动物断头处死,每只动物各取1耳,听泡置2.5%戊二醛内,解剖显微镜下摘除镫骨,刺破圆窗,挑开蜗顶,灌流固定后浸渍固定24 h,磷酸缓冲液漂洗后解剖标本,取出各回基底膜及血管纹,1%锇酸后固定,丙酮脱水,环氧树脂包埋,超薄切片,铀铅染色。
4.耳蜗硬铺片标本制备:取材时间同上,另1耳听泡硝酸银染色法常规制备[3]。
5.微生物纸片扩散法测定庆大霉素血药浓度[4]:GM组和GM+DFO组动物第9和19 d注射庆大霉素后 1 h剪爪取血,测定血清抑菌环直径,再查标准曲线图,得出血清庆大霉素浓度。
6.检测肾功:取样时间和方法同上,全自动生化检测仪(日立公司, 日本)测定血清尿素氮和肌苷。
7.检测耳蜗和肾皮质的丙二醛、超氧化物歧化酶和铁:GM组和GM+DFO组第9和19 d各取3只动物活杀,迅速取出耳蜗,双耳合为1份标本制成匀浆,4 000 r/min离心10 min,取上清液-20 ℃冻存。采用南京建成生物研究所的丙二醛、超氧化物歧化酶和考马斯亮蓝蛋白测定试剂盒,按说明操作检测;原子吸收分光光度计(天津第一医疗器材设备厂)检测铁的含量。统计学处理用方差分析。
结果
1.实验中GM组3只动物分别于用药第11、18和19 d死亡,死前均消瘦、无力、耳廓反射消失,其余各组无死亡。第19 d对照组平均增长35 g,而GM组动物体重平均减少2 g, 差异有显著性(P<0.05);停药后GM组动物恢复体重增长。GM+DFO组、DFO组第19 d体重平均增长33g和31g,和对照组之间比较差异无显著性(P>0.05)。
2.ABR检测:豚鼠的ABR以Ⅲ波最著,因此以Ⅲ波判断ABR反应阈(dB SPL),用药后各组动物ABR平均反应阈移见图1。虽然实验动物对药物的反应具有个体差异,但GM+DFO组反应阈损害较GM组明显减轻。用药后第4周,GM组4 kHz及8 kHz反应阈平均(±s,下同)升高(44±18)dB及(60±17)dB,而GM+DFO组则分别为(16±5)dB及(21±5)dB,两组差异有显著性(P<0.05)。损伤具有频率差异,高频损伤明显比低频损伤严重(P<0.01)。DFO组和对照组反应阈变化不明显(P>0.05)。
图1 用药后各组动物不同频率短声刺激的ABR平均阈移
3.耳蜗铺片及透射电镜所见:耳蜗铺片显示GM组用药后3排外毛细胞损伤明显比GM+DFO组重(图2,3),且从顶回至底回逐渐加重,外毛细胞损伤较内毛细胞重。透射电镜见GM组耳蜗毛细胞胞浆细胞器减少,呈空泡变性(图4);GM+DFO组则显示损伤较轻,线粒体完整,出现一些多泡体结构(图5)。GM组还可见耳蜗传入神经突触线粒体空化,血管纹边缘细胞突起中的少数线粒体亦出现嵴减少、空化。DFO组与对照组用药前后耳蜗铺片及透射电镜改变不明显。
图2耳蜗铺片见GM组第二回外毛细胞损伤明显,仅有少数残留,内毛细胞亦见损伤。×400
图3耳蜗铺片见GM+DFO组第二回外毛细胞损伤较轻,内毛细胞无缺失。×400
图4 透射电镜观察GM组毛细胞胞浆稀疏呈空泡变性,胞核浓缩。×6000
图5透射电镜观察GM+DFO组毛细胞胞浆丰富,有多个多泡体形成。×4000
4.血清检测:GM组和GM+DFO组动物的血清GM浓度差异无显著性(P>0.05)。第9 d测定值(
