一、材料与方法
1.Tris缓冲液配方:Tris 1214mg,EDTA-Na2 18mg,MgCl2*6H2O1020mg,二羟基乙醇40mg,NaCl 2.92g,蔗糖45g,并加蒸馏水至1000ml。用盐酸调pH至7.0。
2.甾体5α-还原酶制备:取3只雌性Sprague-Dawely大白鼠(体重301±11克,由中国科学院上海实验动物中心提供),禁食一夜后取肝脏浸入上述Tris缓冲液中,于0℃条件下匀浆,依次作10000g30min和105000g 1hr离心,制备出作为甾体5α-还原酶载体的肝脏微粒体悬液,置于-70℃冰箱备用,如此可保存至少1个月。
3.试剂与仪器:(1)睾丸酮:Sigma化学公司产,用无水乙醇(AR)溶解经Tris缓冲液稀释,至反应时最终为0、4、5、6、8、12、24和40μmol/L系列浓度,其中0浓度为空白对照。(2)NADPH:Sigma化学公司产,用Tris缓冲液配制,至反应时最终浓度为22μmol/L。(3)紫外光栅分光光度计:型号:752,上海第三分析仪器厂生产。
4.实验方法及步骤:将系列浓度T、甾体5α-还原酶制备液、NADPH和Tris缓冲液一起作37℃连续孵育,用紫外光栅分光光度计在340nm处连续测定NADPH的特征吸收波长OD值的时间变化曲线。根据NADPH标准曲线折算出作为酶学反应底物NADPH10min内的浓度下降速率(μmol*L-1*min-1),扣除空白对照管的下降速率(nmol*L-1*min-1),即为酶活性〔7〕。进一步以各浓度管中酶活性对T浓度通过GraphPAD inPlot (GraphPAD Softwar Inc.)统计软件,再由Lineweaver-Burk倒数作图法求出大白鼠肝脏甾体5α-还原酶米氏常数Km值〔8〕。
二、结果
1.NADPH标准曲线
配制NADPH浓度系列测定OD340nm值,绘制标准曲线。在实验前、中、后分别作相同的标准曲线,合并后得方程OD340nm=0.004857×NADPH(μmol/L),r=0.9971。
2.NADPH(OD340nm)浓度下降曲线及酶活性测定
在37℃孵育时,测定T各浓度管中OD340nm连续下降值,可以绘制下降曲线图,发现各曲线起始段近似直线,故取前10min内各点作直线回归分析得彼此的下降率,并以此分别减去空白对照管的下降率,所得数据即为酶活性。结果T为4、5、6、8、12、24和40μmol/L各浓度管的酶活性(v)分别为0.2110±0.0095、0.2218±0.0134、0.2446±0.0043、0.2641±0.0055、0.3079±0.0049、0.3340±0.0122和0.3623±0.0264μmol*L-1*min-1。将上述两组数据经Lineweaver-Burk倒数法作图,得直线方程为Y=9.0784X+2.5756,r=0.9940(Y轴:1/v;X轴:1/T),由此计算出大白鼠肝脏甾体5α-还原酶的米氏常数Km=3524.8nmol/L。
三、讨论
在T向DHT的转化过程中,NADPH是必不可少的供氢体〔9〕,同时它也可能作为其它反应的供氢体,是一种非特异性的还原型辅酶〔10〕,因此在实验中设置空白对照组尤为重要,以便测定本底值。在本实验过程中,可以清楚地观察到空白对照组的NADPH含量轻微地直线下降,实验组中实测数据扣除这种下降率后才为真实结果。
该方法与国内外一般所采用的同位素法相比较为简便快捷、准确可靠。实施同位素测定方法过程中〔11〕,除了本实验步骤外,尚需将T进行同位素标记,孵育后进行薄板层析及刮板后作同位素计数,步骤多耗时长,相反本实验方法则简便快捷易操作。另外,诸如同位素标定和测定时、层析板处理过程中随机测量误差及系统误差难以避免。在简单的酶反应中,产物的生成速率应该等于底物的分解速率〔8〕。同位素法在37℃孵育30min终止反应后进行产物〔3H〕-DHT测定,求其平均生成速率,以代表酶的活性,实际上是一个30min内的平均概念,不是酶学反应的初速率。而分光光度计法连续测定反应体系中NADPH在反应初始10min内的下降速率,通过直线回归计算出底物NADPH的分解速率,更贴近酶学反应的初速率,即酶活性。反应的起始10min的线型几乎是直线,而30min内的线型已经是曲线了。因此,分光光度计法更准确可靠。
将两种方法进行比较,同位素法所用试剂除了分光光度计法所用的之外,尚需将T进行同位素标记,还有薄板层析及同位素计数时所需的一系列试剂和设备,无形中增加了实验成本。不仅费用高,而且需要测定仪器精确,复杂的操作程序需要精良的技术。所以,分光光度计法显得较为经济实用。
本实验方法可以进一步发展为治疗BPH药物甾体5α-还原酶抑制剂的体外筛选模型。
参考文献
1Boudon c, Lumbroso S, Lobaccaro JM, et al. Molecular study of the 5α-reductase type 2 gene in three European families with 5α-reductase deficiency. J Clin Endocrinol Metab, 1995,80:2149.
2Metcalf BW, Holt DA, Levy MA, et al. potent inhibition of human steroid 5α-reductase(EC 1.3,1.30) by 3-androstene-3-carboxylic acids. Bioorg Chem, 1989,17:372.
3崔毓桂. 类固醇5α-还原酶与5α-还原酶缺陷症.《国外医学》内分泌学分册. 1995,15(1):4.
4Tenover JS. Prostates, pates, and pimples: the potential medical uses of steroid 5α-reductase inhibitors. Endocrinol Metab Clin North Am, 1991,20:893.
5Horton R. Editorial: benign prostatic hyperplasia: new insights. J Clin Endocrinol Metab, 1995,74:504A.
6Celler J. Therapeutic controversies: clinical treatment of benign prostatic hyperplasia. J Clin Endocrinol Metab,1995,80:745.
7Guilbault GG. Handbook of enzymatic methods of analysis. New York and Basel: marcel Dekker Inc, 1976:99~100.
8Guilbault GG. Enzymatic methods of analysis. London: Pergamon Press Inc., 1970:185~180.
9Metcalf BW, Holt DA, Levy MA, et al. communication: potent inhibition of human steroid 5α-reductase(EC 1.3,1.30) by3-androstene-3-carboxylicacids. Bioorganic Chemistry,1989,17:372.
10张昌颖. 中国医学百科全书—生物化学.上海:上海科学技术出版社,1989:192~193.
11崔毓桂,张桂元. 正常成年男性5α-还原酶活性的测定.生殖医学杂志. 1995,4(1):11.
(收稿:1996-10-03修回:1997-03-24)
