［摘要］为探讨巨噬细胞集落刺激因子抗单核巨噬细胞过氧化损伤的机理，以富含巨噬细胞集落刺激因子的L929细胞条件培养基作为细胞因子来源，采用酶活性测定、反转录聚合酶链反应等技术，研究了巨噬细胞集落刺激因子对小鼠巨噬细胞系RAW264.7细胞谷胱甘肽过氧化物酶活性及mRNA表达的影响。结果发现，巨噬细胞集落刺激因子可以提高RAW264.7细胞硒谷胱甘肽过氧化物酶及非硒谷胱甘肽过氧化物酶活性，并增强RAW264.7细胞血浆谷胱甘肽过氧化物酶mRNA的表达，而对RAW264.7细胞磷脂氢过氧化物谷胱甘肽过氧化物酶的表达无诱导作用。

［中图分类号］Q554.4［文献标识码］A

［文章编号］1007-3949(2000)-02-0099-04

Effect of Macrophage Colony-Stimulating Factor on Glutathione Peroxidase Activity and Gene Expression in RAW 264.7 Cells

PANG Zhan-Jun, ZHOU Mei， and CHEN Yuan

(Research Laboratory of Free Radical Medicine, the First Military Medical University, Guangzhou 510515, China)

ABSTRACTAimIn order to find out the mechanism that macrophage colony-stimulating factor protects monocytes/macrophages from oxidative injury.Methods We used macrophage colong-stimulating factor(MCSF)-riched L929 cell conditioned medium (L929-CM) to investigate the effect of MCSF on glutathione peroxidase (GPx) gene expression in RAW264.7 cells applying enzyme activity determination and reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) technique.ResultsIt showed that MCSF could improve selenium-dependent glutathione peroxidase (SeGPx) and non-selenium-dependent glutathione peroxidase (non-SeGPx) activity in RAW264.7 cells.MCSF could also increase plasma glutathione peroxidase (PLGPx) mRNA expression in the cells.However, there was no induction of phosphalipid hydroperoxide glutathione peroxidase (PHGPx) expression by MCSF.ConclusionMCSF might protect monocytes / macrophages from oxidative injury through improving antioxidant enzymes activities and gene expression.

MeSHMacrophage Colony-Stimulating Factor; Glutathione Peroxidase; Cell Line，RAW264.7;Polymerase Chain Reaction， Reverse Transcription; Oxidative Stress

巨噬细胞集落刺激因子（macrophage colony-stimulating factor, MCSF）是一种巨噬细胞特异性的生长因子，在小鼠L929细胞系中呈高表达，L929细胞条件培养基可用来进行有关MCSF的研究^［1］。以往的研究发现，MCSF可以减轻叔丁基氢过氧化物对单核巨噬细胞的氧化损伤^［2,3］。为探讨MCSF对单核巨噬细胞氧化损伤的保护作用是否与其对细胞抗氧化酶的影响有关，我们以L929细胞条件培养基作为MCSF来源，研究了MCSF对小鼠巨噬细胞系RAW264.7细胞谷胱甘肽过氧化物酶（glutathione peroxidase, GPx）表达的影响。

1材料与方法

1.1材料

RPMI-1640培养基、还原型谷胱甘肽、苯甲基磺酰氟、抑肽酶（aprotinin）、枯烯过氧氢（cumene hydroperoxide）、DNTB ［5,5'-dithiobis (2-nitrobenzoic acid)］、2-疏基异丙醇、焦碳酸二乙酯（diethyl pyrocarbonate，DEPC)、异硫氰酸胍、十二烷基肌氨酸钠（sarcosyl）、放线菌素D（actinomycin D）、环己酰亚胺（cycloheximide）、加大麻素（acetovanilone）、dNTPs、RNase抑制剂和矿物油等均购自Sigma公司；MMLV逆转录酶、oligo (dT)12-18、无RNase的DNase I购自美国Promega公司；根据Genbank 小鼠cDNA序列，采用oligo 4.0引物设计软件设计PCR引物，磷脂氢过氧化物谷胱甘肽过氧化物酶（phospholipid hydroperoxide glutathione peroxidase, PHGPx）：5'-GCA CGA ATT CTC AGC CAA GGA C-3'及5'-CAC GCA GCC GTT CTT ATC AAT G-3'，扩增片段大小为406 bp；血浆谷胱甘肽过氧化物酶（plasma glutathione peroxidse, PLGPx）：5'-ACG TAG CCA GCT ACT GAG GTC T-3'及5'-CAT CTT GAC GTT GCT GAC TGT G-3'，扩增片段大小为425 bp；β-actin：5'-GTG GGC CGC TCT AGG CAC CA-3'及5'-CGG TTG GCC TTA GGG TTC AGG GGG G-3'，扩增片段为245 bp。所用引物均由GIBCO BRL公司合成。小牛血清购自杭州四季青公司；其它试剂均为分析纯。

1.2L929细胞条件培养基的收集与活性鉴定

L929细胞采用含10%小牛血清的DMEM培养基在5%CO₂、95%湿润空气、37℃条件下培养，待细胞生长至融合单层后，换不含血清的DMEM培养基继续培养5～7天，将培养基离心后吸取上清，并过滤除菌，即为L929细胞条件培养基。活性鉴定采用集落计数法^［4］：取小鼠股骨骨髓细胞在含30%小牛血清、0.45 mmol/L还原型谷胱甘肽、0.3%琼脂和20% L929细胞条件培养基、髓细胞浓度为10⁸个/L的培养体系中培养7天（以DMEM培养基替换L929细胞条件培养基作为对照），按超过50个细胞的细胞团为一个集落计数，收集到的L929细胞条件培养基的平均活性约为5×10⁵ CFU-GM/L。

1.3细胞破碎与过氧化物酶活性测定

用细胞破碎液 (50 mmol/L Tris-HCl，pH8.0；150 mmol/L NaCl；0.02% NaNO₃；0.1 g/L PMSF；0.001 g/L aprotinin；1% Triton X-100)破碎细胞，4℃放置30 min，将细胞裂解物转移至Eppendorf管中，4℃ 10 000 g离心30 min，吸取上清液用作酶活性及蛋白含量测定。谷胱甘肽过氧化物酶活性测定采用DTNB直接法^［5］。硒谷胱甘肽过氧化物酶（selenium-dependent glutathione peroxidase, SeGPx）活性测定以1.5 mmol/L H₂O₂为底物，总谷胱甘肽过氧化物酶(total glutathione peroxidase, TGPx)活性测定以9.0 mmol/L 枯烯过氧氢为底物，非硒谷胱甘肽过氧化物酶（non-selenium dependent glutathione peroxidase, non-SeGPx）活性以TGPx与SeGPx活性测定值之差表示。用还原型谷胱甘肽作为标准，以使还原型谷胱甘肽降低1 μmol作为1个活性单位(u)，结果以每克蛋白质的酶活性单位数表示(u/g)。蛋白含量测定采用Lowry's法，以酪蛋白为标准参照。

1.4反转录聚合酶链反应

采用异硫氰酸胍-酚-氯仿一步法提取细胞总RNA^［6］。向提取的RNA样品加入1 u无RNase的DNase I，室温下放置2 h以降解除去其中的基因组DNA。再次纯化后，用紫外分光光度法分别测定样品在260和280 nm波长上的光密度，初步估算RNA的浓度与纯度。合成cDNA第一链：向一0.5 mL离心管中分别加入dNTPs （每种浓度为10 mmol/L）各2 μL；oligo (dT)12-18 (0.1 g/L) 1 μL；RNase抑制剂20 u；RNA（煮沸5 min并迅速置冰上冷却以使其变性）2 μg；50 mmol/L MgCl₂ 1 μL；5×PCR缓冲液4 μL，加DEPC处理水至总体积20 μL。加入MMLV反转录酶100～200 u，于37℃反应60 min。然后于95℃加热5 min，以灭活反转录酶。取一新的0.5 mL离心管，依次加入β-actin及PLGPx或PHGPx“上游”及“下游”引物（20 μmol/L）各1 μL，4种dNTP的混合液（每种浓度为2.5 mmol/L）1 μL，5×PCR扩增缓冲液4 μL，逆转录产物2 μL，加水至20 μL。97℃变性5 min，冷却至4℃。加Taq DNA聚合酶1～2 u。加20 μL轻矿物油覆盖于反应混合液上。设定聚合酶链反应参数 （94℃ 30 s; 56℃ 45 s; 72℃ 60 s），共30次循环。将产物在1%琼脂糖凝胶上电泳，紫外灯下观察、摄影。

1.5统计学处理

数据表示为均值±标准差，统计学分析采用t检验。

2结 果

2.1巨噬细胞集落刺激因子对谷胱甘肽过氧化物酶活性的影响

将指数生长期的RAW264.7细胞接种于含1%小牛血清的培养基中，实验组给予25%（V/V）L929细胞条件培养基（MCSF）处理，对照组不给处理。24 h后收集、破碎细胞，测定GPx活性，结果发现受MCSF作用的细胞SeGPx及non-SeGPx活性均比对照组高（表1，Table 1）。

2.2巨噬细胞集落刺激因子对血浆谷胱甘肽过氧化物酶表达的影响

将RAW264.7细胞分为五组。对照组、MCSF处理组（培养体系中加25% L929细胞条件培养基）、MCSF+加大麻素组（25% L929细胞条件培养基+ 0.05 g/L 加大麻素）、MCSF+放线菌素 D组（25% L929细胞条件培养基+0.005 g/L放线菌素D）和MCSF+环已酰亚胺组（25% L929细胞条件培养基+0.03 g/L 环已酰亚胺组）。细胞于37℃、5% CO₂条件下培养6h后，收集细胞，提取总RNA，采用反转录聚合酶链反应方法检测PLGPx mRNA的表达。结果显示，MCSF处理组的细胞PLGPx mRNA表达较对照组细胞明显增高，而MCSF的这种诱导作用未被培养体系中加入的放线菌素D、环已酰亚胺或加大麻素减弱（图1,Figure 1）。

表1.巨噬细胞集落刺激因子对RAW264.7细胞谷胱甘肽过氧化物酶活性的影响.

Tab