Protection of hematopoietic stem cells by MIP-1α and PF4 against the cytotoxicity of chemotherapeutic agents
HUANG Ke, HUANG Shaoliang, PAN Jingxuan, et al.
(Pediatric Department, Sun Yat-sen Memorial Hospital of Zhongshan Medical University, Guangzhou510120,China)
【Abstract】ObjectiveTo study the protective effects of macrophage inflammatory protein-1α(MIP-1α) and platelet factor 4(PF4), alone and in combination, on hematopoietic stem/progenitor cells against the cytotoxicity of chemotherapeutic drugs. MethodsBone marrow and cord blood mononuclear cells(BMMNC and CBMNC) and HL-60 cells were pretreated with MIP-1α, PF4, MIP-1α+ PF4,and PBS respectively for 48 hours, and then incubated with DNR for an additional 24 hours. Cell viability, cell cycle, CD34+ CD38- cells, colony forming units(CFU) and protein expression of p16, p27 gene were measured. Results①Cell viability, the number of CD34+ CD38- cells and CFU yields of BMMNC and CBMNC in MIP-1α and PF4 groups were significantly higher than that in control groups(P<0.05). ②Cells in S+G2 phase in MIP-1αand PF4 groups were significantly fewer than that in control groups(P<0.05). ③MIP-1α upregulated the expression of p16 gene of stem/progenitor cells. PF4 showed no effects on expression of both p16 and p27 genes. ④Hematopoietic protection of MIP-1α was stronger than that of PF4. No cooperative effect could be seen in combination of the two agents.⑤Cell viability, cell cycle and expression of p16 and p27 gene of HL-60 cells were not affected by either MIP-1α or PF4. ConclusionMIP-1α and PF4 can reversibly and selectively protect hematopoietic stem/progenitor cells against cytotoxicity of chemotherapeutic agents. MIP-1α can suppress cell proliferation by upregulating the expression of p16 gene and block the cell cycle at G0 phase, resulting in the elevation of cell resistance to chemotherapeutic drugs.
【Key word】Stem cell factor;Hematopoietic stem cell;Macrophage inflammatory protein-1;Platelet factor 4;Protein p16;Protein p27
骨髓造血抑制是肿瘤患者化疗过程中常见的并发症。近年来研究发现,血小板第4因子(PF4)、巨噬细胞炎性蛋白(MIP-1α)等造血负调控因子对骨髓造血祖细胞化疗药物损伤具有保护作用,能选择性、可逆性地阻止正常造血祖细胞于静止期,提高细胞对周期特异性药物的耐受性[1,2]。但是,造血负调控因子作用的分子机制目前不十分清楚。我们比较了 MIP-1α、PF4单独与联合应用对骨髓造血细胞柔红霉素(DNR)损伤的保护效应及其分子机制,为其进入临床应用提供一定的理论与实验依据。
材料和方法
1实验材料
1.1骨髓及脐血单个核细胞(MNC)悬液的制备:骨髓标本13份来自本院儿科住院患儿,其中白血病完全缓解期6例,地中海贫血1例,特发性血小板减少性紫癜2例,淋巴瘤未侵犯骨髓4例。每例抽取骨髓3 ml。脐血标本10份,来自本院产房足月顺产新生儿,母婴均无疾病。每份脐血以肝素抗凝,留取脐血15ml。于24h内骨髓及脐血分别经Ficoll分离液分离有核细胞,再经RPMI 1640培养液洗涤2次,将沉淀细胞加入含体积分数为10%胎牛血清(FCS)的RPMI 1640培养液中,充分混匀,制成细胞悬液,计数有核细胞。细胞终浓度2×106/ml,细胞存活率95%以上,培养24h后备用。
1.2HL-60细胞株:将复苏后的HL-60细胞(中山医科大学肿瘤研究所提供)悬浮于含体积分数为10% FCS的RPMI 1640培养液并移至培养瓶中培养,2~3d传代1次,细胞浓度2×106/ml。细胞存活率95%以上。
2实验方法实验分4组,分别为 MIP-1α组[加入MIP-1α(美国Peprotech公司产品)100ng/ml。因其半衰期短,需每天加药]、PF4组[加入PF4(法国贝特公司)5μg/ml]、PF4+ MIP-1α联合组(剂量同前)及空白对照组(仅加PBS)。HL-60细胞株作为对照组。以上各组设3个复孔,每孔含细胞数1×106ml,培养48h,每组取1孔细胞测细胞周期及P16、P27蛋白表达,剩下每孔细胞加DNR(1mg/ml)培养24h,取细胞洗涤后作活性检测、造血祖细胞集落培养及CD34+CD38-细胞含量的测定。未经因子或PBS预处理且不接受DNR孵育的细胞定为预处理前细胞。
2.1锥虫蓝(台盼蓝)拒染法检测细胞活性:以40g/L锥虫蓝染色细胞,30s~1min后计算细胞拒染率,即为细胞存活率。
2.2流式细胞仪(FACS)测CD34+CD38-细胞含量:每份样品MNC≥5×104,标记抗体(DaK0公司)为PE结合的CD34抗体和FITC标记的CD38抗体,对照为IgG1-PE和IgG1-FITC。根据PE和FITC的荧光激发特性进行双标记参数分析。所用FACS为美国COULTER公司ELITE型,波长488nm。
2.3体外造血祖细胞集落培养:按本室常规法[3]进行粒-巨噬细胞系集落形成单位(CFU-GM)及混合集落形成单位(CFU-MIX)培养。第7~14天在倒置显微镜下计数CFU-GM,第14~28天计数CFU-MIX。40个以上细胞组成的细胞团为一个集落,CFU-MIX为集落内含红细胞及巨核样细胞、粒系细胞、巨噬细胞成分。瑞氏-姬姆萨染色确定细胞类型并摄片。
2.4FACS检测细胞增殖周期(S+G2):各实验组细胞培养48h,培养液洗涤后调整细胞浓度≥105/ml,以体积分数为70%的乙醇固定过夜(4℃),FACS测出细胞各周期的DNA相对含量和百分率。
2.5免疫组织化学法检测P16、P27蛋白的表达:骨髓及HL-60各组细胞经PBS洗涤,取细胞离心涂片待干燥,甲醛固定,采用ABC法(中山生物试剂公司ABC免疫试剂盒,P16、P27鼠抗人单抗为美国Neomarker公司产品)进行免疫组织化学染色。两种蛋白均在细胞浆及细胞核中表达,胞浆、胞核见弥漫散在棕色颗粒为阳性表达。根据染色强度评分:无显色0分,淡黄色1分,棕黄色2分,棕褐色3分。每片计数200个细胞,根据染色强度及阳性细胞数计算染色系数,对结果进行半定量。染色系数=染色强度×染色细胞百分率。
3统计学分析本实验资料均以±s表示,多组间比较采用随机区组方差分析(Two-way ANOVA)及多个样本均数两两比较q检验(Newman-Keuls法)。
结果
1MIP-1α及PF4对骨髓及脐血MNC存活率的影响新鲜骨髓及脐血MNC锥虫蓝拒染率>95%。MIP-1α、PF4、MIP-1α+PF4组及空白对照组的骨髓、脐血MNC孵育48h后,分别加入DNR再孵育24h,结果加因子组MNC存活率均明显高于空白对照组(P值均<0.05),骨髓MNC分别为(79.0±6.0)%,(74.0±9.0)%,(79.0±6.0)%及(48.0±14.0)%,脐血MNC分别为(79.9±5.7)%,(78.2±4.7)%,(77.0±5.4)%,(59.6±8.3)%,加因子各组间差异均无显著性,MIP-1α与PF4相加并无协同作用。HL-60细胞各组存活率分别为(28.0±7.0)%,(30.0±5.0)%,(25.0±6.0)%,(35.0±9.0)%,组间差异无显著性(P>0.05),均比骨髓及脐血MNC存活率低(P值均<0.05)。
2MIP-1α及PF4对骨髓及脐血造血细胞集落形成的影响由表1,2可见MIP-1α及PF4负调控因子对造血祖细胞集落生长有明显影响,加负调控因子各
