材料与方法雄性豚鼠20只,体重250~300 g,随机分为对照组(C组)、哮喘组(A组)各10只。A组:参照Huston方法[3]复制哮喘模型,诱发后24小时采集标本。C组:用0.9%生理盐水替代OVA致敏,诱发同A组。实验豚鼠麻醉后,开胸灌注生理盐水约200 ml,取左下肺置于4%多聚甲醛-PBS缓冲液固定,修整、石蜡包埋,切片。右肺4℃剪切成1 mm×1 mm大小,进行PKC提取及TXA2的测定。PKC活性的测定参照[4]进行。剪碎的肺组织每只动物称取0.25 g×3次,放入装有台氏液3只试管中,其中A管中含有100 ng·ml-1H-7,37℃孵育5分钟,A、B两管加PMA至10 ng·ml-1,三管同时37℃孵育30分钟,吸取上清,根据试剂盒说明书进行放射免疫测定。PKC免疫组织化学参照文献[5]进行。判断标准:每张切片随机取染色区域四个高倍视野(×400)染色强度用0~3级计分:0级:无染色、1级:轻度阳性染色、2级:中度阳性染色、3级:强阳性染色;染色范围分为0~4级:0级:无染色、1级:<25%细胞染色、2级:25%~50%细胞染色、3级:50%~75%细胞染色、4级:>75%细胞染色。染色总评分为染色强度+染色范围。
数据统计分析:采用非配对t检验和直线相关分析。
结果A组总PKC活性为[(466±111) fmol·mg-1.min],明显高于对照组[(102±14) fmol·mg-1.min-1],两组比较差异有显著性(P<0.01),膜PKC活性及所占比例为(156±41)、(33±4),与对照组(27±6、26±4)比较(P<0.01,P<0.05)。免疫组化显示,哮喘时见较广泛阳性染色细胞,分布于支气管粘膜、气管平滑肌(图1)、肺泡间、甚至肺泡腔内(图2)半定量计分表明,哮喘组(4.7±0.6)与对照组(1.7±0.5)比较(P<0.01)。PMA引起TXA2释放[(392±52) pg·ml-1]、[(229±53) pg·ml-1]与H-7[(63±14) pg·ml-1],[(34±5) pg·ml-1]比较(P<0.01);H-7和未用药豚鼠(61±20,34±5)比较差异无显著性(P>0.05)。相关分析表明,PKC活性与PMA诱导的TXA2释放量呈显著正相关(γ=0.702,P<0.01)。
图1哮喘豚鼠肺组织,肺泡内大量炎性细胞浸润,
PKC呈阳性表达DAB染色,苏木素复染×400
图2哮喘豚鼠支气管腔EOS浸润,浸润细胞及支气管粘膜、
气道平滑肌PKC呈强阳性表达DAB染色,苏木素复染×400
讨论在哮喘发病过程中,炎性细胞出现了PKC活性以及分布比例的变化。哮喘患者淋巴细胞[6]总PKC活性、膜PKC活性比例显著增加,患者肺功能与总PKC活性呈显著负相关;血和BALF低密度嗜酸细胞[7]PKC活性显著增加。本组研究结果表明,哮喘豚鼠肺组织PKC呈强阳性表达,总PCK活性、膜PKC活性及所占比例显著增高,提示哮喘时PKC含量增加及活化,PMA是PKC高效活化剂,H-7是其特异性抑制剂,PMA引起肺组织释放TXA2增加,用H-7预处理后,PMA未引起TXA2的释放。相关分析表明PKC活性与TXA2的释放量呈显著正相关,说明是PKC的活化引起了TXA2的释放增加。其机制可能是促使TXA2合成增加,因为TXA2的半衰期极短,生成后迅速代谢为TXB2而灭活。PKC活化可引起cPLA2[8]、COX[9]活性增加,它们是合成TXA2的关键酶。本组实验表明,在哮喘豚鼠肺级织中,细胞PKC表达增加,伴PKC的转位活化;PKC的活化引起炎性介质的释放,提示PKC在哮喘中起着重要作用,抑制PKC的活化或表达可能有利于哮喘的治疗。
参考文献
1Nishizuka Y. Protein kinase 5:protein kinase C and lipid signaling for sustained cellular responses. FASEB J, 1995, 9:484-494.
2中华医学会呼吸病学分会哮喘学组.支气管哮喘防治指南(支气管哮喘的定义、诊断、治疗、疗效判断标准及教育和管理方案).中华结核和呼吸杂志,1997,20:261-265.
3Huston PA, Church MK, Clay TP, et al. Early and late-phase bronchoconstriction after allergen challenge of nonanesthetized guinea pigs. I. The association of disordered airway physiology to leukocyte infiltration. Am Rev Respir Dis, 1988, 137:548-557.
4Ohoka Y, Kuwata T, Asada A, et al. Regulation of thymocyte lineage commitment by the level of claaical protein kinase C activity. J Immunol, 1997, 158:5707-5716.
5蔡文琴,王伯云,主编.实用免疫细胞化学与核酸分子杂交技术.第1版.成都:四川科学技术出版社,1994.94-96.
6Bansal SK, Jha A, Jaismal AS, et al. Increased levels of protein kinase C in lymphocyted in asthuma: posible mechanism of regulation. Eur Respir J, 1997, 10:308-313.
7Bates ME, Bertics PJ, Calhoum WJ, et al. Increased protein kinase C activity in low density eosinohils. J Immunol, 1993, 150:4486-4493.
8Chang EY, Szallasi Z, Acs P, et al. Functional effects of overecpression of protein kinase C-α, β, δ, ε and -η in the mast cell line RBL-2H3. J Immunol, 1997, 159:2624-2632.
9Vezza R, Habib A, Li H, et al. Regulation of cyclooxygenase by protein kinase C. J Biol Chem, 1996, 271:30028-30033.
(收稿:1998-09-17修回:1998-12-05)
