【摘要】目的探讨松果体功能减退致褪黑素(MT)分泌减少对β-淀粉样蛋白(Aβ)神经毒性的影响及其初步机制。方法将SD 6周大鼠随机分为2组,实验组摘除松果体,对照组给假手术,2组均在术后40 d给予Aβ1-40 10 μg右侧海马注射,7 d后标本用Nissl、HE、改进甲醇刚果红染色,TUNEL原位标记方法检测海马神经元病理变化。结果以图像分析仪测量Nissl染色神经细胞带丢失情况,发现实验组丢失长度〔(694.63±81.09)μm〕明显多于对照组〔(406.57±92.38)μm,P<0.01〕;细胞凋亡数在HE染色(16.37±5.30)个和TUNEL法(38.92±8.81)个均比对照组相应显色方法增多〔分别为(7.29±2.50)个、(20.63±5.28)个,均为P<0.01〕;Aβ1-40注射周围的胶质细胞浸润数(276.37±36.33)个也明显多于对照组〔(187.93±21.81)个,P<0.01〕。结论大鼠松果体摘除可以加重Aβ神经毒性作用,其机制可能是加重了炎症反应。
Effects of pinealectomy on the neurotoxicity of amyloid β protein
XU Bin, CHEN Junpao, LIN Yu , et al.
(Department of Neurology, Zhujiang Hospital, the First Military Medical University, Guangzhou 510282 ,China)
【Abstract】ObjectiveTo investigate the effects of decreased secretion of melatonin caused by pinealectomy on the neurotoxicity of amyloid β protein (Aβ) and primarily the mechanism. MethodsThe 6 week old SD rats were randomly divided into two groups. Experimental rats were pinealectomized and the control group was performed by sham operation. Amyloid β protein 1-40 (Aβ1-40) 10 μg in 1μl was injected into the rat hippocampus at the 40th day after operation. The pathological changes of the hippocampus neurons were examined with toluidine blue, haematoxylin-eosin, improved Congo-red staining and terminal deoxynucleotidyl-transferase mediated d-UTP-biotin nick end labeling (TUNEL) at the 7th day after injection. ResultsIt was showed from the Image Analyser that the Nissl-stained depletion in the hippocampus neuron band of the experimental group was significantly wider than that of the control group〔(694.63±81.09) vs (406.57±92.38)μm, P<0.01〕. The number of apoptotic cells by HE staining and TUNEL method in the pinealectomized rats were increased significantly than that in the control group 〔(16.37±5.30) vs (7.29±2.50)cells/field; (38.92±8.81) vs (20.63±5.28) cells/field, P<0.01〕 respectively. The number of infiltrated glial cells around the injection site in the experimental group were also significantly increased than that of the control group〔(276.37±36.33) vs (187.93±21.81)cells/field, P<0.01〕 .ConclusionsInflammatory infiltration of glial cells might contribute the mechanism of amyloid β protein neurotoxicity due to pinealectomy.
【Key words】Pineal body;Melatonin;Amyloid beta-protein; Nervo degeneration
目前,关于阿尔茨海默病(AD)的病因和发病机制仍不清,但多数学者认为家族遗传及各种环境因素的交织构成AD发病的复杂病因谱,β-淀粉样蛋白(Aβ)沉积可能是所有因素导致AD发病的共同途径。1995年Maurizi〔1〕提出褪黑素(MT)减少是引起AD的病因,其理由为:(1)AD患者中MT明显减少;(2)MT可以显著清除羟自由基;(3)AD患者脑细胞中线粒体DNA损伤与羟自由基损害作用一致。Pappolla等〔2〕通过神经母细胞瘤细胞(N2a)、嗜铬细胞瘤细胞(P12)培养,发现MT可以抑制Aβ诱导细胞凋亡。我们也发现MT于在体水平可以抑制Aβ诱导海马细胞凋亡及其神经毒性作用〔3〕。但目前尚无MT减少与Aβ神经毒性关系的报道,我们于1999年1~9月通过摘除大鼠松果体制成MT缺失模型,然后给海马微量注射Aβ1-40,观察Aβ神经毒性变化情况,初步探讨MT减少和Aβ神经毒性的关系。
材料与方法
一、药品及试剂
Aβ1-40购自美国Sigma公司,注射前用无菌生理盐水将Aβ1-40稀释成10 μg/μl,37℃下孵育1周备用。TUNEL原位标记试剂盒购自德国Boehringer Mannheim公司。
二、实验动物及MT缺失模型的制备
雄性SD大鼠16只,由第一军医大学实验动物中心提供,体重190~210 g,鼠龄6周,随机分为2组,实验组和对照组各8只,置隔音环境中,室温18~22℃,11 h光照(8∶30~19∶30),13 h黑暗(19∶30~8∶30),自由摄食、饮水,适应3 d后行手术。实验组行松果体摘除术,参考文献〔4〕方法进行,对照组行假手术,手术均在19∶30~22∶30进行,每次手术做实验组和对照组大鼠各1只,术后单独饲养,7 d后实验组和对照组大鼠分别放一起。继续饲养33 d后,实验组和对照组均给予Aβ1-40右侧海马注射。首先用10%水合氯醛腹腔注射(0.4 ml/100 g体重)麻醉大鼠,头部固定在立体定向仪上,剪毛消毒,在头背中部纵向切口,暴露颅骨,参照《大鼠脑立体定位图谱》〔5〕,选右侧海马为注射区,定位坐标:前囟后3.0 mm,右侧旁开2.2 mm,硬膜下2.9 mm。在坐标点周围用牙科钻环行钻开颅骨并分离暴露硬脑膜,缓慢垂直进针,注射Aβ1-40溶液1 μl(10 μg),注射时间5 min,留针5 min,然后缓慢撤针。
三、组织切片制备
Aβ1-40注射后7 d,将大鼠再次麻醉(10%水合氯醛0.6 ml/100 g体重腹腔注射),暴露心脏,通过左心室插管至主动脉,生理盐水100~150 ml冲洗,10%中性缓冲甲醛溶液150 ml快速灌注,250 ml慢滴,2 h后取脑,检查实验组松果体摘除是否完全,淘汰松果体去除不完全者,对松果体摘除完全者以及对照组取标本(标本选在注射部前后1.5 mm处,标本厚3 mm),后固定3 h,常规脱水、透明、浸蜡、包埋、切片,切片厚度6 μm,脑组织出现损伤时取片,每隔30张(间隔距离180 μm)取4张平片,直到损伤消失。一套用做甲苯胺蓝Nissl染色,一套HE染色,另抽数张切片做改进甲醇刚果红染色,最后一套用于TUNEL原位标记法。
四、组化及TUNEL法标记DNA片段
Nissl染色用于观察海马神经元丢失情况,HE染色用于观察注射周围胶质细胞反应及神经元凋亡。改进甲醇刚果红染色用于观察Aβ沉积及Aβ周围胶质细胞浸润情况,对周围神经元损伤也可显示。其操作如下:(1)石蜡切片,常规二甲苯、乙醇下行脱蜡至水;(2)Harris苏木素染色5 min,自来水冲洗数分钟;(3)1%盐酸酒精分化数秒,温水显蓝;(4)甲醇刚果红染色15 min,自来水冲洗数分钟;(5)0.2%碱性酒精液分化数秒,自来水冲洗;(6)常规脱水、透明、封片。TUNEL原位标记DNA片段检测凋亡细胞,操作步骤按试剂盒说明书进行。
五、海马神经元病理改变的观察
神经元变性体积计算参照Morimoto等〔6〕的方法。在Leica Diaplan显微镜及Leica Quantimet 500+图像分析仪上,测量Nissl染色组织切片海马CA1~4以及齿状回神经元细胞带变性、坏死、细胞丢失的程度。由于海马细胞带的宽度是一定的,海马神经元变性、坏死、细胞丢失的体积V=∫∑ayidx,yi(μm):海马CA1~4以及齿状回神经细胞带病理改变的长度;a(μm):海马细胞带的宽度;dx(μm):组织切片间隔距离,即180μm。由于a、dx是恒定的,V只与yi有关,所以我们仅以神经元损害的长度作指标来反映海马神经元损害程度。炎症改变情况以40倍物镜下HE染色组织切片上Aβ1-40沉积部周围浸润胶质细胞数(每张切片选择3个相近视野,取平均值)反映炎症变化情况。凋亡细胞计数可在HE染色或在TUNEL原位标记法上进行,方法同胶质细胞计数,部位选在海马神经元病理改变明显处。
六、统计方法
组间均数比较用SPSS8.0forwindows进行非配对t检验。
结果
一、海马神经元变性、坏死、丢失情况
正常海马细胞由神经细胞和胶质细胞组成,主要的神经细胞规则地排列,使海马结构非常清楚,如CA1~3锥体细胞和齿状回颗粒细胞。假手术组Aβ1-40注射7 d后,海马神经元病理改变仅限于CA1注射针道和齿状回Aβ1-40沉积局部的神经元,表现为锥体细胞带和颗粒细胞带紊乱、变稀、中断,高倍镜下见到神经元胞膜破裂、细胞萎缩、胞核变小(图1),但距齿状回较远处很少有或仅有很轻病理改变。松果体摘除组Aβ1-40注射,不仅CA1注射针道和Aβ1-40沉积局部有较明显形态学改变,而且距Aβ1-40沉积较远处神经元也有病理改变,表现为CA1注射针道明显增宽,锥体细胞带和颗粒细胞带病变更明显,可见很长齿状回颗粒细胞带消失(图2)<
