THE HUMAN INTERLEUKIN-2 EXPRESSION IN PRIMARY
SKELETAL MUSCLE CELLS OF THE RAT
Pan Haiyan△, Tian jingsheng, Wang Ke, Zhao Chunli, Zheng Shaopeng, Xue Shaobai*
(Beijing Institute for Neuroscience,Capital University of Medical sciences,Beijing,
*Molecular and Cellular Program,Biology Department of Beijing Normal university,Beijing)
【Abstract】 Objective By using hIL2-muscle model to exploit a new gene therapeutics for cancer.Methods Two mammalian expression vectors were constructed,which contained 1kb human interleukin-2 cDNA,and were transfected into primary skeletal muscle cells of the rats mediated by lipofectin(hIL2-muscle model).The hIL-2 expression in primary muscle cells was detected by immunohistochemical stain method.Results Identification of pCMV-IL2 and PRSV-IL2 was confirmed by digesting with restrictive endonucleases,about 10% positive cells were observed and the expression level of pCMV-IL2 and pRSV-IL2 had no difference in the muscle cells.ConclusionRecombinant plasmid DNAs might be suitable for gene therapeutics for cancer.
【Key words】 hIL2; Muscle cells; Lipofectin mediated gene transfer
目前,对肿瘤的基因治疗研究正方兴未艾、发展迅速。肿瘤基因治疗中大约有1/3的方案是将细胞因子基因导入肿瘤细胞后作为肿瘤疫苗植入体内,以期持续分泌活性细胞因子来达到增强抗肿瘤免疫反应的目的[1]。在诸多细胞因子中,白介素-2(interleukin-2,IL2)是体内一种重要的参与免疫调节的细胞因子,也是肿瘤临床治疗中应用最早的细胞因子[2]。相反,由于IL2在血液中半衰期短,反复输入IL2会产生严重的毒副作用,因此用体内直接输入IL2的方法来治疗肿瘤有很大的缺点[3]。用IL2基因修饰的肿瘤细胞可以使之在肿瘤部位表达分泌,从而增加了IL2的靶向性,而且肿瘤疫苗还会诱导特异性的抗肿瘤免疫反应,故用IL2基因导入肿瘤细胞行肿瘤基因治疗有很好的前景。然而,以肿瘤细胞作为靶细胞也有许多不足之处[4]:肿瘤细胞自体建系困难,稳定的自体细胞系除了在黑色素瘤和肾癌患者中约30%病人可建立稳定的自体细胞系外,在其他患者尚未见成功,将永久性的细胞系回输体内有易于癌化趋势。因此我们拟采用原代培养的骨骼肌做为靶细胞转入IL2基因,希望通过其能分泌细胞因子达到治疗肿瘤的目的,为肿瘤的基因治疗提供新途径。
材料和方法
1. pGEM-3zf(+)-IL2多克隆载体的构建
用限制性内切酶PstI酶切pGEM-3zf(+)质粒(购自华美生物工程公司),与纯化的1.0kbh-IL2 cDNA片段(两端pstI酶切,由美国Michigan大学医学中心Thompson CB教授惠赠),用T4连接酶(华美生物工程公司)连接;转化感受态菌DH5α或JM109,将细菌涂布于含X-gal和IPTG的平板上进行蓝/白斑筛选,酶切鉴定阳性克隆(图1)。重组质粒的提取、纯化、酶切、片段回收、连接及大肠杆菌感受态制备均参见文献[5]。
2. 真核表达载体pCMV-IL2构建
用pCMV-LacZ质粒(美国Wisconsin大学Waisman中心惠赠),经限制性内切酶HindⅢ、EcoR Ⅰ(华美生物工程公司)双酶切,去掉3.0kb的LacZ基因,回收含CMV启动子的4.3kb片段;pGEM-3zf(+)-IL2经相同双酶切处理,提取其中1.0kb的h-IL2cDNA片段,与含有CMV启动子的DNA片段经T4连接酶连接,建成pCMV-IL2真核载体(图2)。
图1多克隆载体pGEM-IL2构建示意图
Fig.1 Construction of recombinant vector pGEM-IL2.
图2表达载体pCMV-IL2构建示意图
Fig.2 Construction of eukaryotic expression vector pCMV-IL2.
3. 真核表达载体pRSV-IL2的构建
将pRSV-LacZ质粒(美国Wisconsin大学Waisman中心惠赠),经限制性内切酶HindⅢ、pvuⅡ(华美生物工程公司)酶切,去除其中的LacZ基因,回收其中含有RSV启动子的4.0kb基因片段;将pGEM3zf(+)-IL2经HindⅢ、HincⅡ(华美生物工程公司)双酶切,回收其中1.0kb h-IL2 cDNA片段,与RSV启动子经T4连接酶连接,构建pRSV-IL2真核载体(图3)。
图3表达载体pRSV-IL2构建示意图
Fig.3 Construction of eukaryotic expression vector pRSV-IL2
4. 原代骨骼肌的培养
取新生2~5d的SD大鼠的四肢骨骼肌组织,剪成肉糜后用胰蛋白酶(1∶250,Sigma)和胶原酶(Gibco/BRL)消化,制成细胞悬液并用20μm孔径的滤膜过滤去除组织碎块,所得悬液用Percoll(Sigma)进行密度梯度离心,得出纯化干细胞以5×105细胞密度在35mm平皿内进行原代培养。培养基含5%鸡胚浸出液(Gibco/BRL)、15%马血清(天津血研所)、和80%MEM(Gibco/BRL)。前3d每日换液,以后隔日换液。
5. Lipofectin介导的基因转移
将质粒pCMV-IL2、pRSV-IL2以及作为阳性对照的质粒pRSV-LacZ与Lipofectin分别用无血清培养基(Opti-MEM)稀释至0.75ml,然后逐滴混匀,形成DNA-Lipofectin复合物;将培养2~3d的原代骨骼肌细胞用无血清培养基洗3次后加入DNA-Lipofectin复合物,在37℃、5%CO2条件下放置4~6h,经10%DMSO冲击后,加入完全培养基,继续培养2~3d。
6. ABC免疫组织化学法检测人白介素-2的表达
将35mm平皿取出,对其中培养的转基因后细胞进行免疫组织化学染色,以PBS(0.01mol/L pH7.4)洗2次,用5%戊二醛固定5~10min,以PBS洗(5min×3)。加入含0.1% Triton X-100和1.5%正常马血清的PBS缓冲液,室温下振荡孵育30min,移入鼠抗人白介素-2单克隆抗体(1∶100,购自军事医学科学院)中4℃孵育24h,PBS洗(5min×3)。加入ABC复合物(1∶50),37℃孵育30min,0.05mol/L Tris.HCl缓冲液洗(5min×3),加入含0.5g/L DAB的Tris-HCl缓冲液(0.05mol/L,含0.003% H2O2)中呈色,室温下孵育5~10min。对转入pRSV-LacZ的肌细胞阳性对照经X-gal组织化学染色,方法参见文献[6]。
结果
1. 多克隆载体pGEM3zf(+)-IL2的鉴定
在涂布含有X-gal和IPTG的LB Amp+平板上,长有数百个细胞克隆,蓝和白的比例接近1∶1。用HindⅢ单酶切分析随机挑取的6个白色克隆,全有h-IL2 cDNA插入,用XbaⅠ酶切分析,其中1号和6号是正向克隆,3号是反向克隆(图片未附)。HindⅢ、EcoR Ⅰ分别单酶切下产生4.2kb单一条带,XbaⅠ酶切下产生两条带,即正向0.6kb+3.6kb,反向0.4kb+3.8kb(图4)。
2. 真核表达载体pCMV-IL2和pRSV-IL2的构建
pCMV-IL2组建后全长5.3kb,pRSV-IL2组建后全长5.0kb,经酶切鉴定后显示构建正确(图5)。
3. 真核表达载体在原代培养的骨骼肌细胞中的表达
骨骼肌原代培养中,前3d的培养细胞以成肌细胞(myoblast)形式存在;培养3d后细胞拉长并出现多核,转化为肌管细胞(myotube),以后融合成骨骼肌细胞,在显微镜下可见骨
