Molecular cloning of hTRT catalytic domain and its expression in tumorsYING Jianming*, JIN Yanyan, WANG Heng, HOU Lin, MA Changqing, ZHANG Bo. * Departemtn of Pathology, Beijing Medical University, Beijing, 100083
【Abstract】ObjectiveTo study the expression of hTRT gene in tumors and its significance in cancer diagnosis.MethodsThe expression of hTRT in HeLa cells and PG cells was estimated by RT-PCR and the hTRT cDNA encoding the catalytic domain from HeLa cells were cloned and sequenced. Using in situ hybridization (ISH) techniques, the expression of hTRT mRNA in 54 human tumors were observed and compared with the expression of hTR.ResultshTRT was detected in both HeLa and PG cells. Sequencing showed that the cloned hTRT catalytic domain cDNA was identical with that reported in the literature. hTRT and hTR expressions were detected in 38/46 and 40/46 malignant tumors respectively, while both hTRT and hTR were not detected in 8 benign tumors.ConclusionhTRT was detected in both HeLa and PG cancer cells. hTRT catalytic domains were highly conservative. The expression of hTRT and hTR were both high in malignant tumors and they were strongly correlated. Our results suggest that detection of hTRT was valuable to clinical oncology diagnosis.
【Key words】TelomeraseIn sita hybridzationGene expression
端粒酶是维持端粒长度的逆转录酶,由RNA和蛋白质两部分组成,为核酸蛋白酶,在大多数正常人体细胞中无端粒酶活性,而在永生化细胞和90%的人癌细胞中具有端粒活性。这提示通过对端粒酶的研究将对肿瘤的诊断与治疗具有重要的意义。hTRT(human telomerase reverse transcriptase)是最近克隆的被认为最有可能是端粒酶的蛋白亚单位,hTRT与细胞端粒酶的活性密切相关[1,2]。我们检测了两种细胞(PG细胞和HeLa细胞)的hTRT表达水平,并从HeLa细胞克隆了hTRT催化功能区基因,测序后与从293细胞和淋巴瘤细胞分离的hTRT序列进行比较。对hTRT在肿瘤细胞中的基因表达情况及与hTR(端粒酶RNA组分)表达的相关性运用原位杂交技术进行了初步研究。
材料与方法
1.标本来源:54例肿瘤组织均取自1997年北京医科大学病理系的外检标本,其中包括恶性肿瘤46例:大肠癌8例,乳腺癌7例,鳞癌6例,前列腺癌4例,胃癌4例,结肠癌4例,肺癌2例,肾透明细胞癌2例,子宫内膜癌2例,淋巴结转移癌2例,卵巢浆液性囊腺癌2例,汗腺肌上皮癌1例,肛门基底上皮瘤1例,脊索瘤1例;良性肿瘤8例:乳腺纤维腺瘤4例,内翻性乳头状瘤3例,涎腺多形性腺瘤1例。
2.细胞培养:PG人肺巨癌细胞系为我系建立,RPMI 1640培养基(Sigma公司),加10%小牛血清,37℃,5% CO2培养,HeLa细胞系为DMEM培养基(Sigma公司)。
3.引物设计与制备:根据Nakamura等[1]人报道的hTRT mRNA序列,在开放阅读框架的上下游设计一对引物,预期的最终扩增产物含开放阅读框架序列,长度为626 bp。为方便随后对PCR产物进行克隆,在两引物的5′端分别引入SalⅠ和BamHⅠ酶切位点,并保留4个额外的碱基,以保证限制性内切酶进行有效的切割。引物由赛百盛公司合成:5′-引物5′-TATA GTCGACGTGGAAGATGAGCGTGCGG3′;3′-引物5′ACAC GGATCCACCTTGACAAAGTACAGCTC3′
4.细胞总RNA制备和cDNA第一链合成:用异硫氰酸胍一步法分别制备PG细胞和HeLa细胞的细胞总RNA,以总RNA为模板,以3′引物为逆转录引物,加入AMV逆转录酶合成cDNA第一链,采用50 μl逆转录反应体系,按Promega公司逆转录反应试剂盒使用说明加入各组分,42℃孵育60分钟,95℃5分钟灭活逆转录酶,逆转录产物直接用于PCR或冻存备用。
5.PCR扩增:在100 μl反应体系中,含200 μmol/L dNTPs,1.5 mmol/L MgCl2,1 μmol/L两种引物和1×PCR缓冲液,加入5~10 μl上述逆转录产物和2.5 UTaqDNA聚合酶,反应管中覆盖石蜡油,95℃预变性1分钟,94℃变性50秒,58 ℃退火50秒,72℃延伸30秒,循环30次,最后72℃延伸10分钟结束。取10 μl样品,1.2%琼脂糖凝胶电泳观察。
6.PCR产物的酶切鉴定:选择+275PvuⅡ和+449XhoⅠ(Promega公司)两个酶切位点,用上述两种内切酶对PCR产物进行酶切鉴定。
7.PCR产物的克隆:采用定向克隆策略,用SalⅠ和BamHⅠ(Gibco-BRL)双酶切PCR扩增产物和pBluescriptSK+载体,回收纯化后,按Gibco-BRL公司T4连接酶推荐步骤,26~28℃连接反应2小时,连接混合物转化感受态大肠杆菌JM109菌株,铺于含Amp的琼脂平板,37℃培养过夜,挑取单个菌落培养,碱裂解法小量制备质粒DNA,用SalⅠ和BamHⅠ进行酶切鉴定,筛选出阳性克隆。
8.DNA测序:用碱裂解法大量制备阳性克隆质粒DNA,PEG沉淀纯化质粒,用荧光标记双脱氧链终止法测定序列试剂盒(Perkin-Elmer公司)以T3和T7通用引物对插入片段进行双向自动DNA序列分析(自动荧光DNA序列分析仪/ABI公司),用DNA分析软件分析测定结果。
9.探针的制备:用相应的内切酶将质粒线性化,用体外转录法制备生物素标记的hTR-cRNA和hTRT-cRNA探针。
10.原位杂交:常规石蜡切片,脱蜡,水化后用0.3%H2O2封闭,0.1 mol/L HCl处理,100 μg/ml蛋白酶K消化,4%多聚甲醛固定,90%乙醇脱水,每片组织滴加杂20 μl杂交液(含1 ng/μl cRNA探针,200 μg/ml鲑精DNA,1 mg/ml DTT,50%甲酰胺,2×denhardt液,1 mg/ml葡聚糖,6×SSC),放入含50%甲酰胺湿盒中42℃杂交16~20小时,于2×SSC洗3次,1∶100马血清封闭后用Avidin+Biotin-HRP孵育,最后DNA显色。常规设立阴性对照
11.统计学处理:χ2检验。
结果
1.HeLa、PG细胞与hTRT:用PG肺癌细胞、HeLa细胞来源的RNA分别进行RT-PCR均得到约620 bp的扩增产物,与预计626 bp基本一致,并且2个细胞系产物浓度接近(图1)。用限制性内切酶PvuⅡ、XhoⅠ分别对PCR扩增产物进行酶切,结果表明与预期的完全相符(图2)。
M:标准分子量(pGEM-7Z/HaeⅢ)
1:HeLa细胞2:PG细胞
图1HeLa和PG细胞hTRT RT-PCR扩增产物
M:标准分子量(pGEM-7Z/HaeⅢ) 1. hTRTcDNA;2:hTRT/PvuⅡ;3:hTRT/XhoⅠ
图2hTRTcDNA扩增产物酶切鉴定结果
2.hTRTcDNA的克隆:将从HeLa细胞扩增的cDNA片段克隆于pBluescriptSK+载体的BamHⅠ和SalⅠ位点,重组质粒DNA经BamHⅠ和SalⅠ双酶切消化鉴定(图3),得到4个阳性克隆,分别命名为pBSTRT1,pBSTRT2,pBSTRT3,pBSTRT4。图4为hTRTcDNA插入pBluescriptSK+载体的示意图。
M:标准分子量(λDNA/EcoRⅠ+HindⅢ),1:pBluescript sK/BamHI+SalⅠ;2:hTRTcDNA;3:pBSTRT;4:pBSTRT/BamHⅠ+SalⅠ
图3重组质粒pBSTRT酶切鉴定结果
图4hTRT插入pBluescriptSK+载体示意图
3.pBSTRT的序列分析:序列分析结果表明,HeLa细胞的hTRT序列与文献报道一致,并已插入至pBluescriptSK(+)的SalⅠ和BamHⅠ酶切位点之间。
4.原位杂交检测结果:应用生物素标记的hTRT探针对54例肿瘤组织进行原位杂交(图5~8),hTRT阳性信号主要分布在肿瘤细胞的胞质中,46例恶性肿瘤中38例呈阳性,阳性率为82.6%,并同时对54例肿瘤组织作了端粒酶RNA组分hTR基因表达
