中国图书分类号R392.11R737.11
Therapy of renal cancer with tumor antigen-pulsed, IL-2 gene-modified macrophages
QIU Shi, CAO Xue-Tao, MI Jing et al.
Department of Urology, Changzheng Hospital, Second Military Medical University, Shanghai 200003
AbstractObjective: To investigate the treatment for renal cancer (Renca)-bearing mice with tumor antigen-pulsed, IL-2 gene-modified macrophages and their related immunological mechanism.Methods: Renca-bearing mice were infused with tumor antigen-pulsed, IL-2 gene-modified macrophages. The CTL and NK activities were detected by 4 h 51Cr release assay. Results: Macrophages could be activated by auto-secreted IL-2 after IL-2 gene modification. If IL-2 gene-modified macrophages were pulsed with tumor antigen in vitro and then infused into Renca-bearing mice, pulmonary metastases of Renca-bearing mice were reduced,survival time prolonged apparently and 40% of mice were tumor free. After treatment, NK,CTL activities increased significantly.Conclusion: Infusion of IL-2 gene-modified、tumor antigen-pulsed macrophages might be an effective therapy for renal cancer.
Key words Renal cancerMacrophageInterleukin-2Gene therapyImmunotherapy
肾癌对放、化疗均不敏感,临床上对原发孤立性肾癌均采用根治性肾癌切除术,一旦肾癌淋巴结转移,即使行根治性淋巴结清扫术,患者生存期极少超过5年,如果出现肾癌肝、肺转移或邻近脏器浸润,则预后更差。巨噬细胞(Macrophage,MΦ)过继回输治疗肿瘤已应用于临床十余年,但疗效不理想,这是由于回输的巨噬细胞一旦失去外界的刺激,难以维持活化状态。作为一种新兴治疗方法,基因疗法为治疗肾癌提供了新的研究方向。我们将IL-2基因转入新鲜分离的巨噬细胞,初步证实IL-2基因修饰的巨噬细胞可持续稳定地分泌IL-2,增强了巨噬细胞杀伤活性和抗原提呈能力[1,2]。在此基础上,我们用IL-2基因修饰的抗原冲击致敏的巨噬细胞过继回输治疗肾癌小鼠,并分析了相关的免疫机理。
1材料与方法
1.1材料
1.1.1动物与细胞株BALB/C小鼠,6~8周龄,雄性,由上海必凯实验动物有限公司提供;BALB/C小鼠肾细胞癌细胞(Renca)由美国国立癌症研究所Wiltroult博士馈赠;重组腺病毒包装细胞293细胞(人胚肾细胞)由德国MDC分子医学中心Blankenstein教授惠赠;Yac-1细胞由本室传代培养。
1.1.2主要试剂携带小鼠IL-2基因的重组腺病毒载体Adex1 CA mIL-2 (简称Ad-mIL-2)、携带LacZ对照基因的重组腺病毒载体Adex1 CA-RxZ(简称Ad-LacZ)由日本癌症研究会分子生物治疗研究部Hirofumi Hamada博士惠赠;放射线同位素Na251CrO4购自Amersham公司。
1.2方法
1.2.1肿瘤抗原的制备参见文献[3]。收集对数生长期的Renca细胞,用RPMI-1640配成1×108 ml-1,反复冻融4~5次,离心(5 000 r/min×30 min)收集上清,过滤除菌后用作肿瘤抗原(简称Ag)。大量制备同一批该肿瘤细胞冻融物,作为Ag供体内外实验使用,避免差异。
1.2.2小鼠腹腔巨噬细胞的制备、IL-2基因修饰及抗原致敏常规提取腹腔细胞,孵箱培养2 h后洗去悬浮细胞,可获得较纯的贴壁巨噬细胞。12mmol/L 利多卡因在37℃条件下消化巨噬细胞。按本室常规方法[4],将IL-2基因转染至新鲜分离的巨噬细胞,MOI值为50,同时设立LacZ基因病毒对照和未经基因修饰的细胞对照。IL-2基因修饰后24 h巨噬细胞悬液中再加入制备的肿瘤抗原(MΦ∶Ag为1∶5),作用4 h后,收集巨噬细胞,配成1×107 ml-1待用。
1.2.3肾癌小鼠模型的建立和治疗将对数生长期Renca细胞用RPMI-1640配成1×106 ml-1,取0.1 ml肾癌细胞于小鼠肾包膜下接种(1×105/只),小鼠荷瘤3 d后随机分组并开始治疗。每只小鼠腹腔、尾静脉内各注射已配好的巨噬细胞悬液0.1 ml(2×106 MΦ/只)。每3 d治疗1次,连续4次。观察小鼠存活期,每组10只;4 w后(包括4 w内死亡小鼠)计数肺表面转移结节数目,每组8只。
体内实验分组如下:A组:未治组;B组:RPMI-1640对照组(RPMI-1640);C组:未处理的MΦ组(MΦ);D组:未处理的MΦ+Ag组(MΦ+Ag);E组:对照基因(LacZ)修饰的MΦ组(LacZ-MΦ);F组:对照基因(LacZ)修饰的MΦ+Ag组(LacZ-MΦ+Ag);G组:IL-2基因修饰的MΦ组(IL-2-MΦ);H组:IL-2基因修饰的MΦ+Ag组(IL-2-MΦ+Ag)。
1.2.4小鼠脾细胞CTL活性诱导Renca细胞经30Gy 60Co照射灭活,用于体外CTL活性的诱导。无菌取小鼠脾脏,研磨过200目钢网制成单细胞悬液,用Tris-NH4Cl溶破红细胞,洗3次,制成淋巴细胞悬液,直接进行NK活性测定,部分细胞用完全培养基调浓度为5×106 ml-1,将其与灭活的Renca细胞以20∶1的比例置于含IL-2 100 U/ml、10%FCS的RPMI-1640中培养,3 d后半量换液,7 d后检测CTL活性。
1.2.5小鼠脾细胞NK活性及经诱导的CTL杀伤活性的检测取第4次治疗后3 d荷瘤小鼠脾细胞检测NK及诱导的CTL活性,均采用4 h 51Cr释放法。检测NK活性时选用YAC-1细胞为靶细胞;检测CTL活性时以Renca细胞作为靶细胞,以CT26小鼠结肠腺癌细胞作为对照靶细胞。效靶比为100∶1, 实验中自然释放率均低于15%。
1.2.6统计学处理采用未配对计量资料的t检验。
2结果
2.1治疗后荷瘤小鼠肺表面转移结节数MΦ组和LacZ-MΦ组及相应的肿瘤抗原冲击组(MΦ+Ag组、LacZ-MΦ+Ag组)的荷瘤小鼠肺表面转移结节数与未治疗组、RPMI-1640组相比有明显下降(P<0.05),而MΦ组、LacZ-MΦ组、MΦ+Ag组和LacZ-MΦ+Ag组之间无明显差异;单纯IL-2基因修饰的巨噬细胞治疗组(IL-2-MΦ组)的小鼠肺转移结节数又比未治疗组、RPMI-1640组明显减少(P<0.01),如果该巨噬细胞体外再经肿瘤抗原冲击致敏后回输(IL-2-MΦ+Ag组),则小鼠肺转移结节数进一步明显减少(P<0.001,见图1)。
2.2治疗后荷瘤小鼠存活期IL-2-MΦ组的荷瘤小鼠存活期明显延长,10%小鼠达到长期存活(超过3个月);如果再经体外抗原冲击后回输治疗,小鼠长期存活率达到40%。未治疗组、RPMI-1640组小鼠分别在30~32 d全部死亡; MΦ组、LacZ-MΦ组和MΦ+Ag组、LacZ-MΦ+Ag组仅能延长小鼠存活期,最长达52 d,无小鼠长期存活。肾癌小鼠死后解剖多见血性胸、腹水,肺部可见大小不等的结节性肿瘤转移灶,腹腔也可见种植性肿瘤结节(见图2)。
图1IL-2基因修饰的巨噬细胞治疗后肾癌小鼠肺转移结节数的变化
Fig.1The number of pulmonary metastatic node in renal cancer-bearing mice after treatment with IL-2 gene-modified macrophages
Note:A:No treatment group;B:RPMI-1640 group;C:MΦ group;D:MΦ+Ag group;E:LacZ-MΦ group;F:LacZ-MΦ+Ag group;G:IL-2-MΦ group;H:IL-2-MΦ+Ag group 2.3荷瘤小鼠NK活性的变化未治疗组、RPMI-1640组、MΦ组和LacZ-MΦ组的小鼠NK活性较低,MΦ组和LacZ-MΦ组虽经肿瘤抗原冲击也不能引起NK活性显著增强;而IL-2-MΦ组NK活性显著增强(P<0.05),IL-2-MΦ+Ag组的NK活性进一步增强(与IL-2-MΦ组比P<0.05;与其他各组比P<0.01),说明肿瘤抗原冲击致敏的IL-2基因修饰的MΦ可提高机体的非特异性免疫功能(见图3)。
2.4荷瘤小鼠CTL杀伤活性的变化MΦ+Ag组和LacZ-MΦ+Ag组的CTL活性比未经肿瘤抗原冲击的相应治疗组有所增强,但并不显著(P>0.05);而IL-2-MΦ+Ag组的CTL活性不仅比其他各组显著增强(P<0.01),较IL-2-MΦ组也有明显增强(P<0.05),说明肿瘤抗原冲击致敏的IL-2基因修饰的M<
