张伟京陈喜林江民董陆佳陈虎俞受程
关键词:CD34;造血干细胞;净化;自体造血干细胞移植;MACS装置
大剂量放疗化疗结合自体外周血造血干细胞移植(APBSCT)是治疗高危组恶性淋巴瘤的有效方法,这是近年来治疗学上的一大进展;但是恶性淋巴瘤易侵犯骨髓,瘤细胞也难免释放入外周血,行APBSCT时有可能将少量肿瘤细胞回输给预处理后的患者,从而增加患者复发的机会。CD34+细胞是造血干细胞的表面标记,而瘤细胞常常无此表面标记。CD34+细胞富集仪利用此特性清除瘤细胞,达到净化外周血的目的。我院自1999年1月开始使用CD34+细胞富集仪并获得成功,现报道如下。
1临床资料及治疗方法
患者,男性,23岁,1997年7月出现右颈部肿块,无发热、盗汗和体重下降。外院检查其他部位未见肿块,活检病理报告为霍奇金淋巴瘤结节硬化型。诊断为霍奇金淋巴瘤,结节硬化型,IA期。行COEP(5周期)和COPP(1周期)化疗,达CR。休息2个月后局部复发,随即行CHOP方案化疗1周期,并行右锁骨上区及纵隔放疗,DT50 gy,达PR,后行化疗COEAP方案2周期,达CR。1998年10月右腋下和右胸壁复发,1999年1月在本院就诊,体检:KPS评分90分,右腋下和右胸壁分别及一3 cm×4 cm和4 cm×4 cm大小的肿大淋巴结,未见其他异常。决定行APBSCT。给予卡莫司汀125 mg,d 1~3,表柔比星 100mg,d 8,长春花碱酰胺 6 mg,d 15,化疗后肿瘤进一步缩小。
1.1外周血干细胞 (APBSC) 动员方案及分离
皮下注射 G-CSF 150 μg, 2次/d,d 1~5。d 5~6行外周血干细胞分离2次。采用CS-3 000 plus型血细胞分离机进行外周血干细胞的分离。每次分离10000 ml外周血。分离的细胞经梯度降温后置于液氮中保存。
1.2APBSC的净化
分离后,将分离液体置于CliniMACS系统中进行净化。该系统通过单克隆抗体将CD34+细胞特异性地选出,而其他细胞(包括肿瘤细胞)均被抛弃,从而达到净化干细胞悬液的目的。经上述处理后,CD34+细胞的比率由原来的1.52%提高到98.4%,是处理前的64.7倍。而CD34阴性细胞由98.48%降低到1.6%,CD34+细胞总数富集前为4.38×108,富集后为2.51×108,回收率为57.31%。但是CD34-液和清洗液中仍有少量CD34+细胞,其含量分别是0.1%和32.9%,净化后的细胞悬液置于液氮中保存。
预处理方案:卡莫司汀 250 mg/d,d 1~3;依托泊苷300 mg/d,d3~5;环磷酰胺 1.0 g/d,d 5~7。
干细胞的回输:化疗后24 h开始回输干细胞。回输单核细胞3.04×106/kg,CD34+细胞2.99×106/kg。
造血恢复情况:回输后d 7外周血白细胞达最低,为0.4×109/L,血小板15×109/L。d 8恢复到白细胞1.0×109/L,血小板 40×109/L。d17血象恢复正常。
治疗中患者有轻度至中度消化道反应,主要表现为恶性呕吐、上腹部疼痛、食欲减退,经对症处理后好转。初期有乏力。全过程无感染征象,治疗顺利。
患者自预处理前1 d至外周血白细胞>1.0×109/L之日,移至层流病房。
治疗结果为PR。经胸壁补照电子线,DT50 Gy/5周,近CR。
2讨论
CD34是造血干/祖细胞的的表面标记,利用这一标记,可以纯化造血干/祖细胞,减少瘤细胞的污染,以提高自体造血干/祖细胞移植的疗效。CliniMACS系统是一个CD34+细胞的纯化系统[1]。其原理是将CD34单抗与极为微小的磁性颗粒相接,它与分离后的细胞悬液充分混合后,与CD34+细胞特异性结合,并使其具有磁性标记,在其通过磁柱时被分离出来,从而使得造血细胞得以保存。而肿瘤细胞常常是CD34阴性细胞,因此不会有磁性标记,从而与CD34+的造血细胞分开,由此干细胞悬液得到了净化。目前,这种净化方法已经应用于实体瘤的干细胞移植治疗[2]。我们在治疗中发现,这种净化方法对骨髓重建没有明显不良影响,骨髓重建较快,患者较安全。文献报道此法可以使肿瘤细胞大大减少[1~3]。这种减少肿瘤细胞污染的CD34+细胞移植可能延长患者的生存期,长期随访结果尚待观察。而且在进行这种富集处理前应获取足够的CD34+细胞数。
[作者简介]张伟京(1959-),男,北京人,副主任医师,硕士。
张伟京(军事医学科学院附属医院,北京100850)
陈喜林(军事医学科学院附属医院,北京100850)
江民(军事医学科学院附属医院,北京100850)
董陆佳(军事医学科学院附属医院,北京100850)
陈虎(军事医学科学院附属医院,北京100850)
俞受程(军事医学科学院附属医院,北京100850)
参考文献
[1]Schumm M,Lang P,Taylor G,et al.Isolation of highly purified autologous and allogeneic peripheral CD34+ cells using the CliniMACS Device[J].J Hematother,1999,8(2):209.
[2]Colter M,Jones M,Heimfeld S,et al.CD34+ progenitor cell selection: clinical transplantation,tumor cell purging,gene therapy,ex vivo expansion,and cord blood processing[J].J Hematother,1996,5(2):178.
[3]Handgretinger R,Lang P,Schumm M,et al.Isolation and transplantation of autologous peripheral CD34+ progenitor cells highly purified by magnetic-activated cell sorting[J].Bone Marrow Transplant,1998,21(12):987.
