中图分类号:R373.1+3;Q784 文献标识码:A
文章编号:1000-8721(2000)03-0203-04
Construction of Recombinant Adenovirus Expressing Influenza Virus Haemagglutinin
ZHANG Li-guo,GUO yuan-ji,WEN Le-ying,ZENG Ge-fei,WANG Min,
dONG Jie,GUO Jun-feng,SHI chang-xin,ZHANG Zhi-qing(Institute of Virology, CAPM, Beijing 100052, China)
Abstract: The HA gene of influenza virus A1/PR8/34 was amplified by RT-PCR and cloned into the shuttle plasmid pAd5C. The constructed plasmid and the largest fragment of adenovirus type 5 genome DNA digested by EcoR I were cotransfected into 293 cells. Recombinant virus was selected by PCR. The expression of HA gene in the cells infected with recombinant virus was identified by SDS-PAGE and Westen blot. Mice immunized with the recombinant virus by nasal route can produce HA specific antibody both in serum and on mucosal surface. The Ad5 vector with E3 region deletion can be used as a vector to construct the recombinant influenza virus vaccine.
Key words: influenza virus; haemagglutinin; adenovirus vector; recombinant vaccine; mucosal immunity
流行性感冒(流感)病毒是危害人类健康重要病原之一,每年都引起不同程度的流感流行。仅在本世纪就曾出现了4次世界性的大流行,给社会经济造成了难以估量的损失。目前预防流感主要采取灭活流感疫苗肌肉注射的方法,但多年的临床实验表明这并不能提供满意的保护,有时保护率低于50%[1-4]。流感灭活疫苗免疫效果差的原因是多方面的,但非常重要的一点是由于免疫途径不合适。流感病毒在人群中主要是通过呼吸道传播的,它侵害上呼吸道时出现与其它病原所引起的普通感冒相同的症状。如果病毒侵犯了下呼吸道,那么就会出现一系列严重的全身性反应,严重者还可导致死亡。研究表明,呼吸道粘膜表面的分泌型IgA在阻止病毒感染中也占有重要的地位,它能抑制病毒的粘附,是机体保护机制中的第一道屏障[5,6],而肌肉注射的灭活疫苗主要诱导产生血清IgG,不能刺激机体产生粘膜免疫。因此,如何改进流感疫苗,使其既能诱生血清IgG又能诱导粘膜免疫,产生分泌型IgA,是流感疫苗研究的难点和重点之一。
由于腺病毒能通过消化道和呼吸道途径感染,在诱导产生粘膜免疫方面具有优势。本研究中利用5型腺病毒载体构建了能表达流感病毒的血凝素抗原的重组病毒,旨在为发展基因工程流感疫苗打下基础。
材料与方法
1病毒和抗体流感病毒A1/PR8/34毒株、小鼠抗A1/PR8/34的多克隆抗血清由国家流感中心保存。辣根过氧化物酶羊抗小鼠IgG为军事医学科学院产品。羊抗小鼠的IgA为Sigma公司的产品。pGME-T载体为Promega公司的产品。
2细胞及质粒293和HeLa细胞由病毒学研究所病毒形态研究室提供。质粒pAd5C[7]和腺病毒基因组DNA由石长信教授惠赠。
3工具酶及其它试剂病毒RNA提取试剂盒、PCR产物回收试剂盒为Invitrogen公司产品。Taq酶、反转录酶为Boehringer Mannheim公司的产品。内切酶为Takara或Bio-lab公司的产品。
4引物的设计合成根据流感病毒A1/PR8/34血凝素基因全长序列设计两条引物:PR8HA-1:5'-gc tct ag aaa atg aag caa acc ta ct-3';PR8HA-2:5'-acg cca gct gca tat ttc tga aat tct aat-3'。基因5'端引物设有XbaI位点,3'末端设有SalI位点。此外设计两对引物供检测重组病毒使用。一对为HA基因内部引物,其扩增长度约为300bp;另一对为腺病毒引物,其序列为5'-tcg ttt ctc agc agc tgt tg-3'和5'-cat ctc taa ctc aaa gcg tgg-3',扩增长度约为800bp。
5流感病毒HA基因的克隆提取病毒RNA,用PR8HA-2引物反转录后进行PCR扩增,反应条件为94℃30s,50℃60s,72℃30s,30个循环后,72℃延伸5min。回收PCR产物与pGME-T连接,转化DH5α受体菌。
6重组病毒的构建与筛选用XbaI和SalI双酶切从pGEM-T/HA上回收HA基因片段,亚克隆到腺病毒载体pAd5C中。用EcoRI酶切AD5基因组DNA,琼脂糖电泳后用透析袋回收3个片段中的最大的片段,通过脂质体(GIBCO BRL)将回收的大片段与pAd5C/HA共转染293细胞。收集转染后细胞,3次冻融之后接种HeLa细胞,48h收获病变的细胞,冻融3次后离心去除细胞碎片,取上清作为模板进行PCR检测。野生型腺病毒感染的HeLa细胞采用同样方法处理后作为阴性对照。
7重组病毒表达HA抗原的鉴定PCR检测阳性的重组病毒在HeLa细胞上进行空斑纯化,然后扩大培养,48h收获病变的细胞,冻融3次后离心去除上清,收集细胞碎片,进行SDS-PAGE电泳观察血凝素基因的表达情况。用小鼠抗流感病毒的多克隆血清进行Western blot鉴定。
8动物免疫采用8周龄的Balb/C小鼠,乙醚麻醉之后通过鼻腔吸入重组病毒(106PFU/只),以野生型腺病毒作为阴性对照。免疫4周后腋窝采血,放血处死小鼠,收集血清。然后暴露小鼠的气管,从喉头部位切开,用注射器接上毛细塑料管从喉头部插入,以1ml PBS(含有1%牛血清白蛋白)注入小鼠的下呼吸道,反复冲洗3次,此为肺洗液。
9抗体检测以纯化的流感病毒包被酶标板4℃过夜,将收集的免疫鼠的血清和肺洗液样品做不同的稀释度后,分别用辣根过氧化物酶标记的羊抗小鼠IgG或羊抗小鼠IgA37℃作用1h,OPD显色后,2mol/L硫酸终止反应。测定OD490的光吸收度。当实验组与对照组OD值之比大于2.0的最大稀释度判为抗体的滴度。
结果
1流感病毒HA基因的克隆以及穿梭质粒的构建
以病毒RNA为模板进行RT-PCR扩增,得到一个1.7kb左右的片段,序列测定证明为A1/PR8/34病毒HA基因。将其克隆进入pGEM-T载体中,将酶切鉴定正确的重组质粒命名为pGEM-T/HA。然后用XbaI和SalI双酶切,回收HA基因,将其亚克隆到腺病毒载体pAd5C中,挑取阳性克隆命名为pAd5C/HA。酶切鉴定如图1。
图1酶切鉴定穿梭质粒pAd5c/HA
Figure 1Identification pAd5c/HA by endonuclease digestion
1. pGEM-T/HA XbaI+Sal I; 2. pAd5c/HA XbaI+Sal I; 3. RT-PCR products of HA gene from A1/PR8/34; 4. DL 15000 marker.2重组病毒的筛选与鉴定
共转染后的293细胞冻融之后接种HeLa细胞,可以导致典型的细胞病变,细胞变圆,膨大,最后脱落,与野生腺病毒病变相似。流感病毒HA基因两对引物能从病变细胞的上清中扩增出1.7kb和300bp大小的片段。腺病毒的引物扩增片段长度约为800bp,与预期扩增长度相符。而以野生型腺病毒为模板时,只有腺病毒的引物能扩增出相应的片段(图2)。
图2PCR鉴定重组病毒
Figure 2Identification of recombinant virus by PCR
1, 2, 3. Wild type adenovirus as template; 5, 6, 7. Recombinant adenovirus as template; 1, 5. Primers for full length of HA gene; 2, 6. Inner primers of HA gene; 3, 7. Primers for adenovirus; 4. DL 2000 marker.
3重组病毒表达HA抗原的检测
重组病毒和野生型腺病毒感染HeLa细胞碎片经SDS-PAGE电泳发现,重组病毒感染的细胞表达比野生型腺病毒感染的细胞在43kD和66kD间有一条表达带,与流感病毒血凝素蛋白的分子量接近,Western blot鉴定能与流感病毒的抗血清发生特异性反应。证明重组病毒能够表达流感病毒的血凝素抗原。
图3重组病毒中HA基因表达的检测
Figure 3Detection of HA expression in the recombinant adenovirus infected HeLa ce
