[中图分类号]Q279[文献标识码]A
[文章编号]1000-4718(2000)05-0462-04
L-dopa induction of pheochromocytoma12 cells apoptosis and the protective function of glutathione
HAN Yan, CHEN Jun-pao, WANG Luo-wei, YANG Yu-qing, CHEN Pei-yuan
(Department of Neurology, The 456th Hospital of PLA, Jinan 250031, China)
[Abstract]AIM:To study the induction of apoptosis of pheochromocytoma (PC12) cell by L-dopa and the clinical significance.METHODS:Using PC12 cells as the model of dopaminergic neurons, in addition to electron microscopy, agarose gel electrophoresis and flow cytometry, the apoptosis ratio by L-dopa and the effect of antioxidant glutathione on PC12 cells were observed.RESULTS:Treatment of PC12 cells with L-dopa in concentrations of 50 μmol/L,100 μmol/L and 150 μmol/L respectively for 24 hours, results revealed that the apoptosis ratio was 12.8%, 24.4%, 37.2%, respectively, which is in cordant with fragment propartions of agarose gel electrophoresis, more higher than that of control(2.3%)(P<0.01).The apoptosis ratio of glutathione+L-dopa group was similar to that of control(P>0.05).CONCLUTION:Induction of apoptosis by L-dopa could be inhibited by glutathione, and oxidative damage may be involved in the pathophysiology of dopaminergic neurons death after long-term treatment of L-dopa.
[MeSH]Levodopa; Cell line; Glutathione;PC12 cells
左旋多巴(L-dopa)及其复方制剂是治疗帕金森病(Parkinsom's disease, PD)最常用且最有效缓解症状的药物,但其疗效一般在2~4年后就会逐渐减退。L-dopa治疗PD疗效减退的机制即其毒性机理不很清楚,早期大量实验已证实L-dopa对体外培养的多巴胺神经元有毒性作用[1];后来在体动物实验发现L-dopa对预先给予6-OHDA处理的大鼠黑质多巴胺神经元有毒性作用[2];近期发现对于预先用线粒体复合物Ⅰ抑制剂鱼藤酮处理后的中脑神经元,低剂量L-dopa 就可以造成多巴胺神经元死亡,而对其它神经元的损害作用不明显,这种损害可以被抗氧化剂所阻断[3]。虽然目前仍缺乏L-dopa在体内对黑质多巴胺神经元有毒性作用的证据[4],但已明确氧化应激参与了PD病人多巴胺神经元变性,包括黑质神经元脂质过氧化、DNA的氧化损伤(8-羟鸟嘌呤增多)和蛋白质羰基氧化[5]。我们通过观察L-dopa对大鼠肾上腺髓质嗜铬细胞瘤(pheochromocytoma,PC12)细胞的凋亡诱导作用及抗氧化剂谷胱甘肽对这一过程的影响,为进一步探讨L-dopa治疗PD疗效减退的机制提供新的思路。PC12细胞具有神经分泌细胞和神经元的性质,已广泛用于神经毒理、神经生化等方面的研究,而且PC12细胞在含有的酶类、膜受体及合成的递质等方面很接近于中脑多巴胺神经元[6],因此我们选PC12细胞作为多巴胺神经元的细胞模型。
材料和方法
一、实验仪器及试剂
EPICS ELITE 型流式细胞仪(美国Coulter公司),JEM-1200型电镜(日本JEOL公司)。谷胱甘肽(glutathione, GSH)、左旋多巴、核糖核酸酶(ribonuclease, RNase)、蛋白酶K(Sigma公司),DMEM、马血清(GIBCO公司),其余试剂为国产分析纯。
二、细胞培养及药物处理
PC12细胞(中科院上海细胞所)置于DMEM培养液中,内含10%马血清,5%胎牛血清。于对数生长期加入L-dopa处理,使其终浓度分别为50 μmol/L、100 μmol/L、150 μmol/L,对照组加入DMEM液,另设150 μmol/L L-dopa加1.0 mmol/L GSH组。每个浓度组及对照组各8瓶,24 h后收集细胞。
三、透射电镜观察L-dopa处理的PC12细胞
细胞培养及药物处理同前,用琼脂糖预包埋法制样,常规固定,制作超薄切片,透射电镜观察、摄片。
四、DNA琼脂糖凝胶电泳
细胞培养和药物处理方法同前,24 h后收集细胞按常规方法提取DNA,走1.8%琼脂糖电泳。电泳后凝胶用计算机图像分析系统(computer documentation analysis system, CDAS)和GelBase/GeIBIot软件(UVP ImageStore 7 500, 英国)做定量分析,所得结果为DNA被RNase分解成180~200 bp的整数倍的寡聚核苷酸片段占所有DNA的百分率。
五、流式细胞术检测凋亡率
细胞培养及药物处理同前,24 h后收集细胞,PBS洗2遍,70%冷乙醇固定,PBS重悬制备单细胞悬液,加入RNase至终浓度50 μg/mL, PI(100 μg/mL)染色30 min, 流式细胞仪采集数据。
六、统计方法
所有实验数据以均数±标准差(±s)表示,两组间比较用两组均数的t检验。
结果
一、透射电镜观察细胞形态学改变
单用L-dopa处理组细胞有的胞浆中溶酶体增多,线粒体增生,此时胞核固缩不明显,为早期凋亡细胞,见图1;有的胞核固缩成均质状,胞浆浓缩,胞质中出现大量空泡,溶酶体消失,剩下很多颗粒状残余物,为晚期凋亡细胞,见图2。
Fig 1The earlier apoptosis cell, lysosomes and mitochondria increased ,chromatin condense slightly (×8 000)
1早期凋亡细胞,溶酶体、线粒体增生,胞核固缩不明显
Fig 2The later apoptosis cell, the cytoplasm concentrated and
vacuolized, chromatin condense sharply (×8 000)
2晚期凋亡细胞,胞浆浓缩,出现空泡,胞核固缩成均质状
二、DNA 琼脂糖电泳结果
实验结果显示对照组、L-dopa与GSH合用组未出现DNA条带,50 μmol/L组开始出现少量条带,100 μmol/L组条带增多,而150 μmol/L组则呈现典型的梯状,见图3。
Fig 3The results from different concentrations of
L-dopa by agarose gel electrophoresis
1:control;2:GSH+L-dopa;3:50μmol/L L-dopa;
4:100 μmol/L L-dopa;5.150 μmol/L L-dopa; 6:DNA mark
3不同浓度L-dopa处理组DNA凝胶电泳结果
三、DNA 降解的定量分析
CDAS分析DNA琼脂糖凝胶电泳结果显示,对照组、L-dopa与GSH合用组、50 μmol/L、100 μmol/L、150 μmol/L各浓度组细胞DNA片段化比例分别为2.5%、2.7%、13.3%、25.7%、39.8%。
四、流式细胞术检测凋亡率
凋亡细胞DNA断裂形成不同大小寡聚核苷酸片段,在FCM的DNA图上表现为G1峰前形成特征性亚二倍体峰(Ap峰),根据该峰所占比例,可进行凋亡定量分析[7]。50 μmol/L、100 μmol/L、150 μmol/L处理组的凋亡率较对照组显著增高(P<0.01),呈明显的量效关系;L-dopa与GSH合用组的凋亡率与对照组比较,差异无显著(P>0.05)。见表1。
表1不同浓度L-dopa处理组的细胞凋亡百分率
Tab 1Comparison of apoptosis ratios between different concentration L-dopa t
