1材料和方法
1.1烫伤模型的建立 体重280~320g的雄性SD大鼠52只, 随机分为烫伤后15、60、180 min及对照组, 其中行ISH和IHC 36只, 每组9只, 行Northern杂交16只, 每组4只。经20%尿酯腹腔麻醉(5 ml/kg)后, 实验组用沸水烫背部7 s, 造成20%体表面积的Ⅱ度烫伤, 对照组用温水浸背部7 s。
1.2ISH和IHC
1.2.1取材 将动物开胸后, 用改良Zamboni固定液行左心室灌流固定30 min, 自前连合平面至乳头体尾端取下丘脑, 两侧包括下丘脑外侧区。20%蔗糖处理过夜后, 行冠状面连续冰冻切片, 片厚40 μm, 每只动物脑切片间隔分为2套, 分别用于ISH和IHC。
1.2.2ISH 将切片用0.1 mol/L甘氨酸、 0.4% Triton X-100和蛋白酶K(1 mg/ml)预处理后, 放入含地高辛标记的大鼠ET-1反义cRNA探针的杂交液中, 43℃保温16 h, 用2×SSC和0.5×SSC漂洗后,加入碱性磷酸酶标记的抗地高辛抗体Fab片段(Boehringer Mannheim公司), 室温放置4 h, 用NBT和BCIP室温显色3 h后封片观察。阴性对照则将切片用RNase A (20 μg/ml) 37℃处理30 min, 其它步骤同上述原位杂交组织化学程序[8]。
1.2.3IHC 切片用0.5% H2O2、0.4%Triton X-100和1%牛血清白蛋白处理后, 用兔抗ET-1血清(1∶100)(Peninsula Lab)孵育4℃过夜, 羊抗兔lgG (1∶200)孵育1 h, 最后与AB复合物(1∶100) 37℃ 1 h, 用H2O2 DAB显色液显色5 min, 漂洗后封片观察。阴性对照则用正常兔血清代替兔抗鼠ET-1抗血清, 其它步骤同上述免疫组织化学程序。
1.2.4地高辛标记的ET-1反义cRNA探针制备[9] 用含大鼠ET-1 cDNA序列编码区468 bp的线性质粒作模板, 加入含地高辛-UTP的NTP混合物(Boehringer Mannheim公司), 在T7 RNA聚合酶作用下体外转录合成反义cRNA探针, 大鼠ET-1质粒由Prof. Yanagisawa馈赠。
1.2.5通用图像颗粒分析[10] 用中国科学院自动化研究所的通用图像颗粒分析系统求各切片中单位面积内阳性杂交信号面积和阳性反应物面积, 据此评价阳性杂交信号强度和免疫反应强度, 每张切片统计3~4个点, 每只鼠统计组织解剖学位置相当10张切片, 求其平均值, 以对照组为基准, 其它组与之平均值比值作为比较内容, 并行组间t检验。
1.3Northern杂交 将动物断头处死后, 迅速取下丘脑, 范围自前连合平面至乳头体尾端, 两侧包括下丘脑外侧区, 立即入液氮中保存。用TRIzol试剂(GBICOBRL公司)抽提总RNA后, 在含有甲醛的凝胶上进行RNA电泳, 并将变性RNA转移至尼龙膜上, 与用随机引物法合成的α-32P (北京亚辉生物医学工程公司)标记的大鼠ET-1 DNA探针和GAPDH DNA探针于杂交液中68℃温育16 h, 经2×SSC和0.1×SSC洗涤后行放射自显影, -40℃曝光96h, 用Pharmacia 公司生产的Image Scanner扫描杂交带, 用Imaster软件测量灰度值。
2结果
2.1下丘脑SON神经元内ET-1 mRNA的变化
光镜下见对照组下丘脑SON神经元胞浆内存在明显的ET-1 mRNA阳性杂交信号, 烫伤后15 min组SON神经元胞浆中单位面积内ET-1 mRNA阳性杂交信号强度较前增加但无统计学意义; 烫伤后60 min组胞浆内阳性杂交信号较前明显增多, 强度高于对照组35.1%(P<0.05), 烫伤后180 min组其杂交信号最强, 高于对照组62.4%(P<0.01) 。下丘脑PVN也有类似变化, 但环状核和室周核未见转录增加。
2.2下丘脑SON神经元内ET-1-ir的变化
光镜下见对照组下丘脑SON神经元胞浆内存在一定量的ET-1阳性反应物。 烫伤后15 min组SON神经元胞浆内ET-1阳性反应物明显减少, 单位面积内阳性反应物面积较对照组显著降低(P<0.01), 为对照组的8.5%; 烫伤后60 min组胞浆内阳性反应物较烫伤后15 min组稍有增加, 为对照组31.5%, 仍明显低于对照组(P<0.01); 烫伤后180 min进一步回升至对照组52.4%), 但仍低于对照组(P<0.01)
2.3Northern杂交观察下丘脑ET-1 mRNA变化
用Northern杂交方法检测到对照组大鼠下丘脑ET-1 mRNA大小约为2.3 kb的杂交条带, ET-1 mRNA含量在烫伤后15 min变化不明显, 烫伤后60 min开始增加, 烫伤后180 min继续增多, 约为对照组的2.5倍, 但杂交条带位置在烫伤前后并无改变。
3讨论
实验表明, 大鼠烫伤后60和180 min, 下丘脑 ET-1 mRNA增加, 且主要在SON和PVN。烫伤后15 min, 下丘脑SON和PVN ET-1 mRNA增加但不显著, 烫伤后60和180 min显著增加, 表明烫伤可致SON和PVN ET-1 mRNA转录缓慢而持续增加, 但不排除ET-1 mRNA代谢延缓所致。非常有趣的是, 烫伤可使下丘脑SON和PVN ET-1的含量先急剧减少后回升, 烫伤后15 min, 其含量就迅速减少至极低值, 其后逐渐回升, 至烫伤后180 min明显回升, 但仍显著低于正常。烫伤后下丘脑SON和PVN ET-1迅速减少, 提示烫伤可能引起下丘脑ET-1分泌至外周循环, 但由于未直接观察释放情况, 故尚需进一步研究。随后ET-1含量逐渐回升, 则可能是下丘脑SON和PVN ET-1 合成增加的结果。 ET-1 mRNA转录增加是烫伤后期下丘脑ET-1含量逐渐回升的原因。 Northern杂交结果则进一步证实, 烫伤后下丘脑 ET-1 mRNA持续增加, 至烫伤后180 min约增加1.5倍, 但 ET-1 mRNA杂交条带位置在烫伤前后并无显著变化, 表明在受烫伤刺激后 ET-1 mRNA5′末端并不延长, 这不同于AVP mRNA和OT mRNA, 后两者在高渗性脱水时除了含量增加外, 同时伴有5′末端的延长[11,12]。ET-1 mRNA转录量增加可能与ET基因中的急性反应元件 (APRE)序列CTGGGA有关[13], APRE的大量复制可启动 ET-1基因转录, 这既是心梗、外科手术和其它应激刺激引起 ET-1基因转录增加的基因机制, 也可能是本实验中 ET-1 mRNA升高的基因机制[14]。但是, 烫伤通过何种因素致使下丘脑 ET-1 mRNA含量增加和ET-1含量减少, 尚需进一步明确。作者认为有以下几种可能性: 烫伤引起渗透压的改变, 刺激神经递质、 多种炎症介质及生物活性物质如血栓素、 缓激肽、 IL-1和TNF-2[2]释放, 从而影响下丘脑ET-1神经元合成和分泌。
综上所述, 烫伤后下丘脑 ET-1 mRNA和 ET-1含量显著变化, 提示下丘脑-垂体轴 ET-1可能参与了烫伤引起的病理生理变化, 具有调节神经内分泌的作用。
参考文献
[1]Yanagisawa M, Kurihara H, Kumura S et al. A novel potent vasoconstrictor peptide produced by vascular endothelial cells. Nature, 1988, 332: 411~415.
[2]Rubanyi GM, Polokoff MA. Endothelins: molecular biology, biochemistry, pharmacology, physiology, and pathophysiology. Pharmacol Rev, 1994, 46 (3): 325~415.
[3]Giaid A, Gibson SJ, Herrero MT et al. Topographical localization<
