实验所用试剂、 仪器有胰酶和DMEM培养基(Gibco),胎牛血清(浙江金华清湖犊牛利用研究所),VNP、 ANP和CNP (ANP和CNP均为人源性, vNP根据人源性ANP和CNP设计合成, 分别为27、 28、 22肽, 中国科学院上海生物化学研究所), PMA (Sigma),考马斯亮蓝G-250及噻唑蓝(MTT)(华美生物工程公司), 以及紫外分光光度计和酶联免疫检测仪(Beckman)。
主要药物配制方法VNP、 ANP及CNP: 将生理盐水配成10-4 mol/L母液, 4℃保存备用(以下除另有说明外, 保存条件均同此),实验时用培养液稀释。 PMA:二甲亚砜(DMSO)配成10-3 mol/L母液, 实验前用培养液稀释[7]。DMEM培养液: 按说明书配制, 用0.1 mol/L的盐酸调pH值至7.2~7.4。 0.125%胰蛋白酶: 生理盐水配制。MTT溶液: 用生理盐水配制, 浓度5mg/ml,2周内有效。以上溶液均经0.22 μm滤膜过滤除菌。考马斯亮蓝染液: 将考马斯亮蓝100 mg溶解于50 ml 95%乙醇中, 加100 ml 85%的磷酸,蒸溜水定容至1000 ml。 细胞裂解液: 为0.3 mol/L NaOH溶液, 用双蒸水配制。
PASMCs培养选用SD大鼠, 雌雄不拘, 体重180~200 g, 无菌取出其肺动脉段, 采用贴片法于37℃、 5%CO2条件下原代培养PASMCs,培养液为10%胎牛血清的DMEM。 静置培养4 d左右可见细胞从组织块边缘爬出, 待细胞生长至亚融合状态后即传代培养, 取3~6代生长良好的细胞进行实验。
MTT比色实验及总蛋白含量的考马斯亮蓝法测定按参考文献[1]进行, 分别将细胞接种于96孔培养板(每孔5×103细胞/100 l)和24孔培养板(每孔5×104细胞/ml), 培养24 h, 换无血清DMEM培养液继续培养24 h, 使细胞静止于G0/G1期, 换无血清DMEM培养液并根据实验分组加入不同试剂(ANP、 cNP和VNP分别在PMA之前1 h加入), 继续培养24 h, 以后检测步骤仍按参考文献[1]进行。
所有数据均以均数±标准差(x±s)表示,方差分析进行显著性检验, 显著性水准为0.05。结果如下:
不同浓度PMA对PASMCs总蛋白含量和MTT之OD值的影响见图1A,B。 可见, 10-9~10-7 mol/L的PMA可使PASMCs总蛋白含量及MTT比色OD值均增加,与0 mol/L、 10-10 mol/L的PMA组之间均有显著差异(P<0.05), 其中10-8 mol/L浓度时PMA刺激效应最强, 相应浓度的DMSO对PASMCs总蛋白含量及OD值无影响(P>0.05),表明PMA可以刺激PASMCs的增殖并有剂量依赖性, 此效应与DMSO无关。
图1. PMA对PASMCs总蛋白含量和PASMCs MTT光吸收值的影响
fig.1.Effects of PMA on total protein and OD value of MTT in PASMCs.*P<0.05,**P<0.01 vs 0 and 10-10 concentration; n=10, mean±SD.
选取刺激效应最强的10-8 mol/L 浓度的PMA, 观察了ANP、 CNP、 VNP对PMA刺激PASMCs增殖的影响(图2A,B)。 VNP(10-8~10-6 mol/L)、 ANP和CNP (10-7~10-6 mol/L)均可显著降低(P<0.05)PMA (10-8 mol/L) 刺激PASMCs总蛋白含量和MTT oD值, 作用强度VNP>CNP>ANP, 说明三种钠尿肽均可抑制PMA刺激的PASMCs增殖, 并有剂量依赖效应, 抑制效应以VNP为最强。
ANP、 CNP是维持体内水、 电解质平衡和血压稳定的重要肽类因子, 具有强大的利钠利尿和舒血管效应。随着研究的深入, 人们发现ANP、 CNP还可抑制多种细胞增殖。VNP是人工合成的钠尿肽家族的新成员,结构与CNP和ANP有很高的同源性。 研究表明[2, 3], VNP与ANP、 CNP有类似的利钠利尿和舒血管效应,但对能否抑制细胞增殖目前尚无报道。我们以往的实验表明, VNP可以防止低氧大鼠肺动脉高压的形成, 抑制肺动脉高压大鼠肺动脉管壁增厚。 因此, 我们推测VNP可能有抑制PASMCs增殖的作用。本研究证明, aNP、 CNP和VNP均可抑制PMA刺激的PASMCs增殖, 从而证实了上述推测, ANP、 CNP的结果也与文献报道[4]基本一致。
图2.三种钠尿肽对PMA (10-8 mol/L) 刺激PASMCs总蛋白含量和PASMCs MTT光吸收值的影响
fig.2.Effects of three natriuretic peptides on total protein and OD value of mTT in PASMCs induced by PMA(10-8 mol/L).*P<0.05, **P<0.01 vs 0 concentration; n=10, mean±SD.
钠尿肽家族的受体目前已知有三种[5]: A受体、 B受体和C受体, 其中A受体、 B受体是鸟苷酸环化酶(GC)耦联受体, 故又称GC-A、 GC-B, c受体则不与GC耦联。ANP、 CNP与三种受体均可结合但亲和力不同, ANP与GC-A亲和力较高, CNP与GC-B亲和力较高。ANP、CNP与GC耦联受体结合后,激活GC, 使细胞内cGMP升高, 从而发挥生理效应, 与C受体结合主要介导自身清除或其它作用[6], VNP与何种受体结合尚不清楚。本研究表明, VNP不但抑制PASMCs增殖,而且作用强于ANP和CNP, 由于A受体主要存在于内皮细胞, B受体主要存在于血管平滑肌细胞, 所以B受体可能是VNP的主要结合受体, 但VNP与ANP、 cNP的结构高度同源, 也有和A受体、 C受体或其它受体结合的可能。 和受体结合的情况有待进一步研究。
PASMCs异常增殖在肺动脉高压发病中具有重要意义, 是一重要的病理改变。肺动脉高压发生时, 体内多种血管活性物质和促细胞增殖因子水平升高,导致肺血管特别是肺小动脉紧张性增强和结构重建, 最终会引起水钠潴留、 水电解质紊乱, 其中PASMCs异常增殖又是其重要环节。 因此, 具有利钠利尿、舒张血管和抑制PASMCs增殖效应的钠尿肽,特别是VNP, 在肺动脉高压的防治中可能具有一定的应用价值。
supported by the National Natural Science Foundation of China (No.39770317)
corresponding author. Tel: 029-3374574; E-mail: DMQ212@253.net董明清(第四军医大学生理学教研室)
朱妙章(第四军医大学生理学教研室)
于军(第四军医大学生理学教研室)
商立军(第四军医大学生理学教研室)
冯华松(唐都医院呼吸科, 西安 710032)
参考文献
[1]司徒镇强, 吴军正. 细胞培养. 西安: 世界图书出版西安公司, 1996, 186~189.
[2]Wei CM, Kim CH, Miller VM et al. A unique synthetic na~tri~uretic and vasorelaxing peptide. J Clin Invest, 1993, 92: 2048~2052.
[3]Feng HS (冯华松), Zang YM (臧益民), Zhu MZ (朱妙章) et al. Vasorelaxing effect of vasonatrin peptide on pulmonary artery in rats. Chin J Cardiac Func, 1998, 10(2): 69~71 (in Chinese with English abstract).
[4]Arjona AA, Hsu CA, Wrenn DS et al. Effects of natriuretic peptides on vascular smooth muscle cells derived from different vascular bed. Gen Pharmacol,1997, 28 (3): 387~392.
[5]Suga SI, Nakao K, Hosoda K et al. Re~ceptor selectivity of natriuretic peptide family, atrial natriuretic peptide, brain natriuretic peptide, and c-type natriuretic peptide. Endocrinology, 1992, 130 (1): 229~239.
[6]Levin ER. Natriuretic peptide C-receptor: more than a clear~ance receptor. am J Physiol, 1993, 264 (Endocrinol Metab 27): E483~E489.
received 1999-08-23Revised 1999-11-01
