1材料和方法
1.1 手术处理雄性SD大鼠(250~400 g), 腹腔注射戊巴比妥钠60 mg/kg作诱导麻醉, 作气管插管和右股动脉、 股静脉插管,动脉导管连接压力传感器用计算机(PC486)记录血压。动物取俯卧位, 头部固定于脑立体定位仪(Narishige)上, 静脉推注1%三碘季铵酚(每隔1 h注射4 mg/kg)制动, 人工通气 (10~12 ml/kg , 60~70次/min), 补充20%氨基甲酸乙酯维持麻醉(静脉注射1 g/kg, 根据动物血压、心率的平稳状况及刺激后肢血压变化等指标适当补充)。切开颅顶至背部正中皮肤, 分离主动脉神经(aortic nerve, AN), 充分暴露延髓背面,调整延髓背面呈水平位。以琼脂生理盐水棉球将创面周围围起成一池状, 将AN挂在银丝刺激电极上,池中倒入温液状石蜡。整个实验过程中终末潮气的CO2浓度维持在4%~5%, 直肠温度维持在37℃左右。
1.2 细胞外记录自制四管玻璃微电极, 其中一管记录电极内灌入3%滂胺天蓝(pontamine sky blue, PSB)-0.5 mol/L醋酸钠溶液,阻抗为4~10 MΩ, 其它三管分别灌入: 0.1 mol/L谷氨酸钠(glutamate, GLU), 0.05 mol/L硫酸皮质酮(corticosterone sulfate, CORT)和2 mol/L NaCl。以延髓闩部(Obex)为参考点, 在RVLM (向前2.6~3.0 mm, 旁开1.6~2.0 mm,延髓背侧表面向下2.8~3.4 mm)记录神经元的自发放电活动, 信号经放大器(Nihon Kohden, MEZ-8210)放大(通过频率100~3*#000 hz)后用时程-幅度窗口鉴别器(中国科学院上海生理研究所, TAWD-94)鉴别单一神经元的动作电位, 使之整形成1 ms的标准方波,输入计算机进行频率积分。当记录到一个RVLM自发放电神经元单位后, 首先微电泳GLU (0~-60 nA), 如果神经元自发放电增加,说明记录的可能是神经元胞体的动作电位, 再作进一步观察; 如果自发放电没有变化, 则可能记录在离胞体较远的部位[7], 这种神经元被放弃。
1.3 RVLM心血管神经元的鉴定标准与方法[8](1)刺激AN时记录的RVLM神经元的放电被抑制。通过电生理刺激器(Nihon Kohden, sEN-7103)对AN进行低频短串刺激(波宽200 μs,强度为0.2~0.8 mA, 间隔5 ms, 串长3, 串频1 Hz),经过计算机叠加(300次)处理后观察刺激AN前后神经元放电频率的变化。(2) 神经元活动可被升高血压所抑制。静脉一次性注射苯肾上腺素(10 μg/kg),同步观察血压和神经元放电的变化。(3) 神经元自发放电活动呈心性节律: 用心电图的R波触发计算机分别对动脉脉搏波和神经信号作平均和叠加(300次)处理,观察神经元在一个或数个心动周期内神经元放电频率的变化。
我们将不符合上述特性的神经元都归纳为非心血管神经元, 同时对它们的性质进行初步的分析。伤害刺激(有齿镊钳夹动物同侧后肢皮肤, 5~20 s)后放电迅速增加的神经元, 被认为是伤害调制性神经元。与上述特性无关的神经元统称为功能不明的神经元。
1.4 微电泳在确定了神经元的性质(心血管神经元或非心血管神经元)后, 通过多功能微电泳系统(中国科学院上海生理研究所, mIS9400)观察微电泳不同药物对神经元自发放电活动的影响。CORT、 GLU用负电流, 电泳时间一般为1 min左右, 两次电泳的间隔约2 min,电泳间隔期药物管均给予保持电流(8 nA, 极性与电泳电流相反), 防止药物外溢。
1.5 统计学处理神经元放电频率用Mean±SD表示, 微电泳后的放电频率变化超过20%认为有意义, 单位放电变化用配对t检验。
1.6 药品 CORT、 GLU、 三碘季铵酚购自Sigma公司。2结果
2.1 微电泳CORT对RVLM心血管神经元放电频率的影响
在RVLM共记录了145个神经元, 基础放电频率为1~34次/s (16.1±6.2次/s, n=145)。其中33个为心血管神经元,基础放电频率为3~25次/s (14.1±4.3次/s, n=33), 微电泳CORT后25个单位 (76%) 放电频率迅速加快 , 作用潜伏期1~54 s(25±7.9 s)。这25个单位, 微电泳CORT前的基础放电频率平均值为12.7±2.9次/s, 以30、 60和 90 nA 电流微电泳 CORT,放电频率分别增加至15.6±3.6、 18.0±3.9和20.9±4.4次/s (均P<0.05, n=25), 平均增加22.8%、 41.7%和64.6%,微电泳停止后放电频率迅速恢复至对照水平。微电泳CORT后放电频率的变化不伴有动作电位波形或幅度的变化, 在这些神经元,对照电流也不能使神经元放电频率发生明显变化。余8个心血管神经元, 对微电泳CORT (最大电泳电流达120 nA)没有明显反应。可被CORT兴奋的心血管神经元与不被兴奋的心血管神经元在基础放电型式、频率和对GLU的敏感性等特征上是相似的。
2.2微电泳CORT对RVLM非心血管神经元放电频率的影响
在RVLM共记录了112个非心血管神经元, 基础放电频率为1~34次/s(17.1±5.8次/s, n=112)。31个神经元的放电在伤害刺激后快速兴奋,被认为是伤害调制性神经元, 其中19个(64%)伤害调制性神经元微电泳CORT后放电频率迅速降低, 微电泳CORT前的基础放电频率平均值为14.7±3.4次/s,以30、 60和90 nA电流微电泳CORT, 放电频率平均值分别显著降低至11.2±2.9、 9.5±3.5和6.3±2.7次/s(P<0.05, n=15), 平均降幅为23.8%、 35.4%和57.1%, 微电泳停止后放电频率迅速恢复至对照水平; 2个单位(6%)微电泳CORT后放电频率迅速加快,这种兴奋作用随着微电泳电流的增加而加强; 10个 (30%)在微电泳CORT后没有反应。81个功能不明确的神经元微电泳CORT后放电频率的变化呈多样性,40%的单位兴奋, 6%的单位抑制, 余54%的单位没有反应。CORT引起的神经元活动变化的潜伏期很短, 平均在30 s内,停止微电泳后神经元放电恢复期也较短, 在1 min以内。
2.3 被记录神经元在RVLM中的分布
实验结束时, 给神经元记录部位微电泳PSB (-15 μA, 10 min), 再用生理盐水100 ml和10%福尔马林溶液300 ml左心室灌流。取脑,10%福尔马林溶液固定, 延髓作50 μm的冠状冰冻切片, 在显微镜下寻找染点, 参照Paxinos and Watson图谱[9],这些神经元均分布在面神经核尾极的后端, 疑核的下方(腹侧), 靠近延髓的腹侧面。但对CORT有反应和无反应的心血管神经元在RVLM中的分布无明显的差异,不同类型的神经元的分布也无明显的差别。
3讨论
本研究发现, 微电泳CORT后, 在很短的时间内(30 s内)神经元的放电频率即开始发生变化, 停止微电泳后放电即恢复至对照水平,这种作用不可能由基因组机制介导, 而只能用非基因组机制来解释。 我们注意到, 微电泳CORT引起的神经元放电的增加, 同微电泳电流的强度成正相关;在排除了电流直接作用后, 表明CORT的作用与神经元周围的CORT浓度有关, 提示本实验所观察到的效应可能是一种受体介导的特异性药理作用。也有作者报道RVLM微量注射CORT导致的心血管效应可能与乙酰胆碱受体有关[10]。但是至今尚没有纯化、 克隆出甾体激素的膜受体, 因此甾体激素快速作用的确切机制仍有待进一步阐明。
rVLM是交感神经活动和心血管功能调节的重要整合中枢, RVLM也是个功能十分复杂的神经解剖部位, 如参与呼吸调节、下行性抗伤害调制等重要功能活动[5,6,11,12]。 我们在本研究中发现CORT对大部分心血管神经元(76%)有快速兴奋作用, 这一结果支持Zhu等的报道,他们发现向大鼠RVLM微量注射皮质酮或醛固酮, 1~5 min后血压明显升高[4]。 我们先前的研究也发现静脉注射CORT也能快速增加RVLM心血管神经元的放电频率[13]。因此我们推测,应激时大量释放的GC, 可能通过非基因组效应快速兴奋RVLM的心血管神经元, 进而增强交感神经活动和心血管系统的功能。
部分RVLM神经元的活动与后肢的伤害刺激有密切的关系, 因此被认为可能是伤害调制性神经元[14]。作者还观察到少量神经元被伤害刺激所抑制(这类神经元未统
