本实验采用6-羟基多巴(6-hydroxydopamine, 6-OHDA)制备的PD大鼠模型, 研究中脑内DA水平与铁含量的关系,以及铁对DA神经元的直接毒性作用和铁离子螯合剂甲磺酸去铁胺(desferrioxamine mesylate, Desferal)对DA神经元的保护作用,以期对PD的病因学及药物治疗学研究提供新的实验依据。
1材料和方法
1.1 PD模型的制备和筛选成年雌性Wistar大鼠(180~220 g)以 8%水合氯醛(400 mg/kg)腹腔注射麻醉。将大鼠头部固定在立体定位仪上,暴露颅骨后参照Paxinos和Watson[6]鼠脑立体定位图谱, 参照Earl法[7]在三维推动器的引导下行内侧前脑束(MFB)两点注射6-OHDA (3.6 mg/ml)。坐标如下: (1) TB, -2.3 mm; AP, -4.4 mm; ML, 1.2 mm; V, -7.8 mm; (2) TB: +3.4 mm; AP, -4.0 mm; ML, 0.8 mm; V, -8.0 mm。两点注射6-OHDA的量分别为2.5 和3.0 μl。
2周后, 开始在特制的四道自动旋转仪中测试由阿朴吗啡(apomorphine, APO)诱发的旋转行为。筛选转速>300 r/h的大鼠作为标准PD大鼠,转速在300 r/h以下者为损毁不成功的PD大鼠(简称非PD大鼠)。
1.2脑铁含量的测定取大鼠双侧纹状体(caudate putamen, CPu)和SN准确称重, 经混合酸溶液消化, 将酸蒸发再用去离子水定容后,在原子吸收分光光度仪上测定样品中总铁的含量, 根据标准曲线得出分析结果。
1.3 黑质内注射FeCl3成年Sprague-Dawley大鼠(200~300g), 8%水合氯醛腹腔注射麻醉。将大鼠头部固定在立体定位仪上,在三维推动器的引导下行SNc内注射FeCl3 。坐标如下: AP, -5.3 mm; L, 1.9 mm; V, -8.2 mm, 注射FeCl3(20 μg/μl)2 μl。
1.4 DA释放量的测定
1.4.1电刺激MFB动物麻醉同前, 将大鼠头部固定在立体定位仪上, 按照坐标[8]: AP, -4.3 mm; ML, 1.5 mm; V, -6.5 mm, 将双极同心圆刺激电极置于MFB区域上方。实验开始后, 每隔10 min将刺激电极下移0.5 mm, 并参照有关资料[8]给予100 Hz、200个脉冲, 1.5 mA、 0.2 ms波宽的负向脉冲方波电刺激, 直至在CPu区记录到DA释放为止。
1.4.2 用快速周期伏安法(FCV)监测CPu区DA的释放[9]按照坐标[8]: AP, +1.1 mm; ML, 2.8 mm; V, -5.5 mm,将碳纤维玻璃微电极插入CPu区, 将刺激电极插入同侧MFB区, 将参考电极置于脑膜表面。实验用Millar伏安分析仪进行CPu区DA释放量的测定。电刺激MFB诱发释放的DA产生的氧化还原波形通过CED1401 plus的特定微机接口输入微机, 通过特定的CED Average软件对波形进行即时的观察、 贮存及联机或脱机分析。DA的氧化电位设定为+600 mV, 在整个实验过程中保持恒定。每次实验结束后, 均用标准DA溶液进行碳纤维微电极的离体校准, 根据各种DA溶液浓度及对应的氧化电流(电压)值,绘出标准曲线, 并根据标准曲线推算出实验测得的各氧化电流(电压)数据对应的DA浓度值, 即可代表电刺激MFB诱发CPu区DA释放的实际释放量[10](以μmol/L为释放量的单位)。
1.5 CPu内DA及其代谢产物含量的测定大鼠断头取脑, 取出双侧CPu, 应用HPLC法进行CPu内DA及其代谢产物含量的测定。实验用仪器为日本岛津公司6A系列高效液相色谱仪。
1.6组织学检查实验后, 先对刺激电极位置进行定位标记: 固定刺激电极位置, 通以0.2mA的阴极直流电, 通电时间为10 s, 使Fe3+沉积于刺激部位;最后对实验大鼠行心脏灌注, 依次注入0.9% NaCl 10 ml和3%铁氰化钾10 ml+3%亚铁氰化钾10 ml+10%福尔马林5 ml混合液,迅速断头取脑, 置于10%福尔马林液固定5~7 d。取冠状面在冰冻切片机上连续切片至MFB和CPu的相应平面,观察刺激电极及工作电极尖端位置是否准确。位置不准确的资料弃去不用。
1.7 统计学处理实验结果以均数±标准误表示, 采用t检验统计学处理, P<0.05表明结果有统计学意义。
2结果
2.1 PD模型大鼠SN内铁含量的改变
实验用6-OHDA PD模型大鼠8只, 非PD大鼠6只, 正常大鼠6只, 取其双侧SN, 测定其铁含量。PD模型大鼠损毁侧SN内铁含量为1.09±0.21 μg/mg脑组织湿重,较健侧及正常对照大鼠损毁侧明显升高(P<0.01); 而非PD大鼠SN内铁含量左右两侧无明显差异,且与正常相比差别无统计学意义(P>0.05)(**P<0.01)。
2.2 PD模型大鼠CPu内铁含量的改变
实验分组同前, 取其双侧CPu, 测定其铁含量。PD模型大鼠损毁侧CPu内铁含量为0.17±0.05 μg/mg脑组织湿重,较健侧及正常对照大鼠损毁侧相比差别无统计学意义(P>0.05)。
2.3 Desferal对6-OHDA单侧损毁大鼠健侧及损毁侧CPu区DA释放量的影响
实验选用Wistar大鼠共16只, 随机分成对照组(侧脑室注射生理盐水)和实验组(侧脑室注射Desferal, 130 ng)。在侧脑室注射NS或Desferal3 min后, 在MFB处两点注射6-OHDA, 坐标及剂量同6-OHDA PD模型大鼠的制备。4周后分别测试其双侧CPu 由电刺激MFB诱发的DA释放量,对照组损毁侧(A) DA释放量为0.25±0.11 μmol/L, 较健侧(C)明显降低(P<0.05); 而给予Desferal组损毁侧(B) dA释放量为1.64±0.70 μmol/L, 与对照组损毁侧(A)相比差别有显著性(P<0.05),而与其健侧(D)相比差别无统计学意义(P>0.05)。这说明Desferal使损毁侧CPu DA释放量增加(~*P<0.05)。
2.4 Desferal对6-OHDA单侧损毁大鼠CPu 区DA及其代谢产物含量的影响
在FCV测定结束后, 大鼠断头取脑行HPLC测定, 结果表明Desferal实验组损毁侧CPu区DA含量为1.03±0.18 ng/mg脑组织湿重,较NS对照组损毁侧CPu 区的DA含量高, 差别有显著性(P<0.01)。DOPAC及HVA的含量也较对照组高, 差异显著(P<0.01)。而Desferal组健侧DA及其代谢产物的含量与对照组健侧相比,差别无统计学意义(P>0.05)(**P<0.01)。
2.5 40 μg FeCl3对大鼠CPu区DA释放量的影响
实验用Sprague Dawley (SD)大鼠9只, SNc内注射FeCl3 40 μg, 3周后由FCV法检测由电刺激MFB诱发的CPu DA释放。损毁侧CPu dA释放量减少至0.13±0.04 μmol/L, 与健侧及正常大鼠相比差异有显著性(P<0.05)(*P<0.05)。
2.6 40 μg FeCl3对大鼠CPu区DA及其代谢产物含量的影响
在FCV测定后, 大鼠断头取脑, 取其纹状体进行HPLC测定, 结果显示: 损毁侧CPu DA减少至0.01±0.003 ng/mg脑组织湿重,与健侧相比差异极显著(P<0.001)(***P<0.001)。
3讨论
帕金森病是由于SNc DA能神经元的退行性变性导致的疾病。SNc DA能神经元纤维投射到CPu, 其释放的递质是DA, 它对CPu的神经元起两种不同的作用,对基底节直接环路起兴奋作用和对间接环路起去抑制作用, 最终对运动起易化作用。当SNc内DA能神经元损伤后, CPu内DA的释放量减少, 对运动的易化作用减弱,产生以运动不能、 静止性震颤和肌强直为临床表现的帕金森病[11]。
在离体实验中, 已经证明6-OHDA可通过将Fe3+还原为Fe2+, 从而使其从铁蛋白上释放出来[12], 促进氧化应激反应,还原生成的Fe2+和氧化应激反应生成的OH·可进一步氧化6-OHDA, 通过Fenton反应, 促进生成超氧阴离子(O·〖TX-*8]2, O·〖TX-*8]2)、 h2O2和OH·。 这些反应产物都可以促进铁从铁蛋白中游离出来[13]。6-OHDA同时也是线粒体呼吸链复合物Ⅰ和Ⅳ的强抑制剂[14],而这一作用可被铁离子螯合剂Desferal所终止。但是, 在体情况下,6-OHDA是否通过以上机制发挥作用目前仍未见相关的报道。本实验首次在体应用大鼠PD模型研究了铁参与6-OHDA 的神经毒性作用过程的可能性,发现6-OHDA损毁成功的PD模型大鼠中, 由于DA能神经元变性, 使得FCV法监测到的DA释放量明显减低, HPLC测定的DA含量也明显降低, 同时,我们发现这些大鼠的SN内
