中国图书资料分类法分类号R631.3-332
Changes of inositol 1,4,5-triphosphate receptors
in inner nuclear membrane of rat liver during sepsis
HAO Sheng-Li#, YANG Jun, ZHANG Sun-Xi, PANG Yong-Zheng, SU Jing-Yi, TANG Chao-Shu
(#Department of Biophysics, Beijing Medical University, Beijing100083)
ABSTRACTObjective: To investigate the changes of inositol triphosphate receptors in the inner nuclear membrane of rat liver during sepsis.Methods: Septic rat model was prepared by cecal ligation and puncture (LCP). The binding site density (Bmax) and affinity (Kd) of IP3 to the inner nuclear membrane were measured by [3H]IP3 binding assay. The function of IP3 receptors to release Ca2+ was assessed by45Ca2+ movement to the inner nuclear membrane vesicle upon the action of IP3.Results: Bmax was increased by 14% (P<0.05) during early sepsis and by 91%(P<0.01) during late sepsis while no alterations of the affinity of IP3R to its ligand was shown during sepsis.45Ca2+ movement to the inner nuclear membrane vesicle was also increased accordingly during sepsis.Conclusion: Binding site density and the function of IP3R in the inner nuclear membrane were progressively increased during sepsis, while there might be no change in the structure.
MeSHSepticemiaLiverCell nucleusInositol 1,4,5-triphosphateReceptors
败血症及继发的多器官功能衰竭是感染性死亡的常见原因[1]。由于败血症的发病机制迄今尚未完全阐明,尽管目前医疗手段不断提高,病死率仍呈上升趋势[1]。现已发现参与败血症的体液因子很多[1],研究这些因子在细胞水平上的相互作用是阐明败血症的关键。其中细胞核内Ca2+信号变化尤其值得关注。Ca2+是调节细胞功能代谢的重要信使物质,近来发现Ca2+不仅为胞浆信使,还是核内信使,参与调控细胞分裂、分化、凋亡、基因转录等核内重要过程[2]。核存在一整套Ca2+信号产生系统[2]:内、外两层核膜形成的腔(即内核膜腔)贮有大量的钙亦为一钙库,Ca2+-ATPase,和1,3,4,5-四磷酸肌醇受体(IP4R)是核Ca2+ 摄取系统,分布于外层核膜上。1,4,5-三磷酸肌醇(inositol 1,4,5 triphosphate, IP3) 受体(IP3 receptor, IP3R)和ryanodine受体(ryanodine receptor, RyR)是核Ca2+释放系统,分布在内核膜上,它们本身即为Ca2+通道, 分别在IP3和环腺苷二磷酸核糖(cyclic ADP ribose, cADPr)作用下,将核被膜腔内贮存的Ca2+释入核浆。核Ca2+摄取和释放系统精确地调控核内[Ca2+]变化,进而影响核的各种功能[2]。本室曾报道败血症大鼠肝细胞核Ca2+泵功能的改变[3],在此基础上本实验观察败血症大鼠肝细胞核内核膜IP3R的变化。以探讨败血症时造成核Ca2+信号改变的机制。
1材料与方法
1.1大鼠败血症模型的制作[4]
雄性SD大鼠200~250 g(北京医科大学实验动物中心提供),术前禁食8 h,自由饮水,异戊巴比妥钠(每1千克体重60 mg, i.p.)麻醉下,开腹,3-0号线结扎盲肠并用18号针头穿刺两孔,分层缝合腹壁。术后皮下注射生理盐水(每1千克体重40 ml)。术后9,18 h分别为早期败血症和晚期败血症。
1.2肝细胞核内核膜的提纯[5]
所有操作在0~4℃下进行。用50ml冰冷TKM液(mmol·L-1:Tris/HCl 50, KCl 25, MgCl2 5; pH 7.5)从门静脉原位灌洗肝,取肝剪碎置于40ml匀浆液(含0.25mol·L-1蔗糖, 1.0mmol·L-1 EGTA 的TKM液)中,匀浆,纱布过滤, 离心(2 250 r·min-1, 10min), 弃上清,将沉淀加6ml匀浆液,12ml含2.3mol·L-1蔗糖的TKM液混匀, 装入离心管,下铺6ml含2.3mol·L-1蔗糖的TKM液。再离心(27 000 r·min-1, 30min), 沉淀即为核。 核用缓冲液A(含0.25 mol·L-1蔗糖,10mmol·L-1 MgCl2,1mmol·L-1 DTT1, 10mg·L-1 leupeptin, 2 mmol·L-1 PMSF2, 50mmol·L-1 Tris- HCl, pH 7.4)重悬, 加入10g·L-1柠檬酸钠, 冰浴30min并轻轻搅拌,离心(500r·min-1, 15min),去外膜核沉于管底。再用缓冲液A重悬沉淀,使核浓度为5g·L-1,加入DNase I (250mg·L-1), 在4℃消化14h, 进行蔗糖密度梯度(0.25、1.6、2.4mol·L-1)离心(27000 r·min-1, 2h), 内核膜位于0.25/1.60mol·L-1蔗糖溶液界面。考马斯亮蓝法定量蛋白。按文献[6]方法测定标志酶活性:NAD焦磷酸化酶,NADPH细胞色素C还原酶。
1.3[3H]IP3结合测定[5]
内核膜用含50 mmol·L-1 Tris-HCl,pH 8.0,2mmol·L-1 EDTA悬浮,进行[3H] IP3结合反应,分别加浓度递增的[3H] IP3(0.05~1.5nmol·L-1), 反应体积400μl,加入核0.1mg蛋白/管 ,0℃下反应10min。 结合与游离的放射性配体([3H]IP3)用离心法(12000 r·min-1, 5min)分离,上清抽吸去除,沉淀加1ml 组织溶解液(Soluene 350, Packard)、乙酸70μl,转至液闪杯中,用液闪仪测定[3H] IP3放射活性。 非特异结合通过加10μmol·L-1 IP3测定。由Scatchard分析得到Kd, Bmax值。
1.445Ca2+ 转运测定[5]
内核膜置于缓冲液B( mmol·L-1, 250蔗糖,2 EGTA, 2 EDTA, 4 K2HPO4, 4 MgCl2, 50 Tris-HCl, pH 8.0 ),并含2.08mmol·L-1 CaCl2 (游离[Ca2+] 为1 μmol·L-1)。 加入7.4×104Bq·ml-145Ca2+ (Amersham公司), 实验分两组, 一组加5 μmol·L-1 IP3,另一组加2μmol·L-1离子霉素(ionomycin), 37℃反应并计时, 按不同时间点通过真空抽滤中止反应,内核膜被截留在GF/ B (whatman) 玻璃纤维膜。用3 ml冰冷的缓冲液B快速冲洗纤维膜, 后将其置于液闪杯中,干燥后在液闪仪测定45Ca2+放射活性。转运的45Ca2+ 量由给定时间点放射性减去开始的放射性求得。
1.5数据处理
实验数据均以±s表示,单因素方差分析或Student- Newman- Keuls检验。
2结果
2.1肝细胞核及内层核膜的鉴定
NAD焦磷酸酶是细胞核的标志酶[5],内层核膜上的活性约为匀浆的21倍[每分每毫克蛋白(78.26±5.44) vs (3.68±0.27) nmol]。而微粒体的标志酶NADPH细胞色素C还原酶,在内层核膜只有匀浆的1/8[每分每毫克蛋白(1.27±0.11) vs(10.27±0.87) nmol]。表明得到的核及内层核膜纯度高、污染小。上述标识酶在败血症组与对照组之间相近, 差别无统计学意义(P>0.05)。<
